PubMed چکیده/رکورد

Gene Expression Analysis from Specific Root Cell Types.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

In plant roots, the diversity of tissues along the radial axis and of developmental stages along the longitudinal axis implies a highly dynamic and heterogeneous gene expression. Many master regulators of gene expression exhibit distinctive temporal expression patterns or are restricted to specific cell types, making whole-root molecular analyses insufficient to resolve their roles in developmental and physiological processes. Here, we report a protocol for fluorescence-activated cell sorting (FACS)-coupled RNA sequencing to analyze, reconstruct, and ultimately dissect the gene regulatory networks (GRNs) involved in root development and physiology, particularly well-suited for genes that are expressed transiently or in rare or restricted cell types. The method relies on selecting an appropriate cell-type-specific reporter line, which enables the isolation of labeled cells with high specificity and minimal contamination. Furthermore, we discuss the relative advantages of FACS-coupled RNA-seq compared with alternative gene-expression methodologies, including quantitative PCR (qPCR), bulk root RNA-seq, single-cell RNA-seq (scRNA-seq), and spatial transcriptomics, considering sensitivity, resolution, input requirements, and cost.

نتیجه فارسی

این مقاله یک پروتکل برای تحلیل بیان ژن در سلول‌های خاص ریشه با استفاده از FACS و RNA-seq ارائه می‌دهد. این روش برای ژن‌هایی که به صورت گذرا یا در سلول‌های نادر بیان می‌شوند مناسب است. مزایای این روش نسبت به روش‌های دیگر مانند qPCR و scRNA-seq بررسی شده است.

  • پروتکل FACS-coupled RNA-seq برای تحلیل بیان ژن در سلول‌های خاص ریشه
  • این روش برای ژن‌های گذرا یا نادر مناسب است
  • استفاده از خط گزارشگر خاص نوع سلول برای جداسازی دقیق
  • مقایسه مزایا و معایب نسبت به روش‌های جایگزین
  • بررسی حساسیت، رزولوشن و هزینه روش‌های مختلف

ترجمه فارسی چکیده

تنوع بافت‌ها در محور شعاعی و مراحل رشد در محور طولی در ریشه‌های گیاهی، بیان ژن پویا و غیرهمگن را نشان می‌دهد. بسیاری از تنظیم‌کننده‌های اصلی بیان ژن الگوهای زمانی متمایزی دارند یا به انواع خاص سلولی محدود می‌شوند، که باعث می‌شود تحلیل‌های مولکولی کل ریشه برای درک نقش آن‌ها در فرآیندهای رشدی و فیزیولوژیک کافی نباشد. در اینجا، ما یک پروتکل برای مرتب‌سازی سلول‌های فعال در فلوئورسنس (FACS) همراه با توالی‌یابی رنا (RNA-seq) برای تحلیل، بازسازی و در نهایت تجزیه شبکه‌های تنظیم‌کننده ژن (GRN) درگیر در رشد و فیزیولوژی ریشه گزارش می‌دهیم، که به ویژه برای ژن‌هایی که به صورت گذرا یا در انواع نادر یا محدود سلولی بیان می‌شوند مناسب است. این روش بر انتخاب یک خط گزارشگر خاص برای نوع سلول وابسته به نوع سلول، که امکان جداسازی سلول‌های برچسب‌خورده با بالاترین ویژگی‌گی و کمترین آلودگی را فراهم می‌کند، تکیه دارد. علاوه بر این، ما مزایای نسبی FACS-coupled RNA-seq را در مقایسه با روش‌های جایگزین بیان ژن، از جمله PCR کوانتیتاتیو (qPCR)، RNA-seq ریشه انبوه، scRNA-seq و ترنسکریپتومیک فضایی، با در نظر گرفتن حساسیت، رزولوشن، نیاز به ورودی و هزینه، بحث می‌کنیم.

روش پژوهش

این روش شامل انتخاب یک خط گزارشگر خاص نوع سلول و استفاده از FACS برای جداسازی سلول‌های برچسب‌خورده است. سپس RNA از سلول‌های جدا شده برای RNA-seq استفاده می‌شود.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های این روش شامل نیاز به خط گزارشگر خاص نوع سلول و هزینه بالای تجهیزات است. همچنین حساسیت و رزولوشن روش نسبت به سایر روش‌ها باید در نظر گرفته شود.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های خاص ریشه گیاهی
مداخله/مواجهه
FACS-coupled RNA-seq
مقایسه
روش‌های جایگزین مانند qPCR، RNA-seq ریشه انبوه، scRNA-seq و ترنسکریپتومیک فضایی
حجم نمونه
در متن گزارش نشده است

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Bulk RNA-sequencingCell-type-specific gene expressionDifferential gene expressionFluorescence-activated cell sorting (FACS)Plant root development
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…