PubMed چکیده/رکورد

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to achieve appropriate differentiation of multiple gastric lineages are inefficient. Here, we provide a detailed stepwise protocol for the differentiation of functional cells in human or mouse gastric organoids through targeted modulation of key signaling pathways. The workflow enables reproducible generation of distinct gastric epithelial cell types and provides a tractable platform to dissect signaling requirements. This platform facilitates downstream mechanistic exploration and enhances the translational utility of gastric organoids for disease modeling and therapeutic development.

نتیجه فارسی

این مقاله یک پروتکل مرحله‌به‌مرحله برای تفاوت‌سازیش سلول‌های عملکردی در بیضه‌های معده انسانی و موش از طریق تنظیم هدفمند مسیرهای سیگنال‌دهی کلیدی ارائه می‌دهد. این روش امکان تولید قابل تکرار انواع مختلف سلول‌های اپیتلیال معده را فراهم می‌کند و یک پلتفرم برای بررسی نیازهای سیگنال‌دهی و کاوش مکانیزمی در پایین‌دست فراهم می‌کند.

  • ارائه یک پروتکل مرحله‌به‌مرحله برای تفاوت‌سازیش سلول‌های عملکردی در بیضه‌های معده.
  • تغییرات هدفمند در مسیرهای سیگنال‌دهی کلیدی برای دستیابی به تفاوت‌سازیش.
  • امکان تولید قابل تکرار انواع مختلف سلول‌های اپیتلیال معده.
  • فراهم کردن یک پلتفرم برای بررسی نیازهای سیگنال‌دهی و کاوش مکانیزمی.

ترجمه فارسی چکیده

در غدد معده، سلول‌های بنیادی بالغ به چندین خط لایه اپیتلیال، از جمله سلول‌های مخاطی حفره‌ای، سلول‌های پاریتال ترشح‌کننده اسید و سلول‌های اصلی ترشح‌کننده آنزیم، تفاوت‌ساز می‌شوند. دستیابی به تفاوت‌سازیش کارآمد و قابل کنترل از سلول‌های بنیادی معده بالغ برای مدل‌سازی هموستازی و بیماری معده در vitro ضروری است. بیضه‌ها یک مدل خوب برای بررسی تفاوت‌سازیش سلول و تشکیل عضو هستند. با این حال، روش‌های دستیابی به تفاوت‌سازیش مناسب چندین خط لایه معده کارآمد نیستند. در اینجا، ما یک پروتکل مرحله‌به‌مرحله جزئی برای تفاوت‌سازیش سلول‌های عملکردی در بیضه‌های معده انسانی یا موش از طریق تنظیم هدفمند مسیرهای سیگنال‌دهی کلیدی ارائه می‌دهیم. جریان کار امکان تولید قابل تکرار انواع مختلف سلول‌های اپیتلیال معده را فراهم می‌کند و یک پلتفرم قابل دسترس برای بررسی نیازهای سیگنال‌دهی فراهم می‌کند. این پلتفرم کاوش مکانیزمی در پایین‌دست را تسهیل می‌کند و کاربرد ترجمه‌ای بیضه‌های معده را برای مدل‌سازی بیماری و توسعه درمانی افزایش می‌دهد.

روش پژوهش

پروتکل شامل تنظیم هدفمند مسیرهای سیگنال‌دهی کلیدی برای تفاوت‌سازیش سلول‌های عملکردی در بیضه‌های معده انسانی و موش است.

محدودیت‌ها

محدودیت‌ها در متن گزارش نشده‌اند.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های بنیادی معده بالغ و بیضه‌های معده انسانی و موش.
مداخله/مواجهه
تنظیم هدفمند مسیرهای سیگنال‌دهی کلیدی.
مقایسه
مورد مقایسه قرار نگرفته است.
حجم نمونه
گزارش نشده است.

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Adult stem cellsCell lineageEpithelial differentiationGastric organoidsSignaling pathways
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…

PubMed2027

An Integrated Workflow for Culturing and AI-Based Profiling of Mouse Intestinal Epithelium.

Two-dimensional (2D) culture systems are powerful in vitro tools that have revolutionized the study of intestinal stem cell biology. These culture systems derived from mouse intestinal and colonic epithelia enable the modeling of tissue architecture, barrier function, and disease mechanisms under physiologically relevant conditions. This protocol details methods for isolating and maintaining mouse intestinal crypts as 2D monolayers. Mo…