PubMed چکیده/رکورد

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpredictable end-joining pathways and facilitates more precise outcomes. This chapter provides a practical protocol for base editing by electroporation in adherent and suspension stem cells. The workflow spans guide design aligned with the editor activity window, in vitro synthesis of mRNA-based editor components, and electroporation for transient delivery. We detail essential steps for cell handling and recovery, followed by standard readouts. Analytical endpoints focus on targeted sequencing to quantify base conversion and assess editing specificity, with guidance for basic interpretation of results. Troubleshooting notes address frequent pitfalls and practical remedies to optimize performance across cell types.

نتیجه فارسی

این فصل یک پروتکل عملی برای ویرایش پایه در سلول‌های بنیادی از طریق الکتروپوریشن ارائه می‌دهد. این روش شامل طراحی راهنما، سنتز مولکول‌های RNA و تحویل موقت سلول‌ها است. نتایج با توالی‌یابی هدفمند برای اندازه‌گیری میزان تبدیل و تخصص ویرایش ارزیابی می‌شوند.

  • ویرایش پایه بدون ایجاد شکستگی دو رشته‌ای عمل می‌کند.
  • پروتکل شامل طراحی راهنما، سنتز mRNA و الکتروپوریشن است.
  • ارزیابی با توالی‌یابی هدفمند برای کمی‌سازی تبدیل انجام می‌شود.
  • راهنمایی‌هایی برای تفسیر نتایج و عیب‌یابی ارائه شده است.

ترجمه فارسی چکیده

ویرایش پایه یک رویکرد متغیر CRISPR است که بدون ایجاد شکستگی دو رشته‌ای، تبدیل‌های تک‌نوکلئوتیدی را ممکن می‌سازد. ویرایشگرهای سیتوزین و آدنین، ترانزیشن‌های C•G به T•A و A•T به G•C را به ترتیب از طریق اتصال یک دئامیناز به یک Cas9 دارای فعالیت کاتالیتیک آسیب‌دیده، که یک آنزیم برش‌دهنده DNA اصلاح‌شده است که فعالیت برش DNA را از دست داده اما قابلیت اتصال DNA را حفظ کرده است، می‌رسانند. با جلوگیری از شکستگی‌های دو رشته‌ای، ویرایش پایه وابستگی به مسیرهای اتصال غیرقابل پیش‌بینی را محدود می‌کند و نتایج دقیق‌تری را تسهیل می‌کند. این فصل یک پروتکل عملی برای ویرایش پایه از طریق الکتروپوریشن در سلول‌های بنیادی چسبنده و معلق ارائه می‌دهد. جریان کار شامل طراحی راهنما که با پنجره فعالیت ویرایشگر همسو است، سنتز درون‌کیسه‌ای مولکول‌های RNA مبتنی بر مولفه‌های ویرایشگر، و الکتروپوریشن برای تحویل موقت است. ما مراحل ضروری برای مدیریت و بازیابی سلول را با خوانش‌های استاندارد بعدی جزئی می‌کنیم. نقاط پایانی تحلیلی بر روی توالی‌یابی هدفمند برای کمی‌سازی تبدیل پایه و ارزیابی تخصص ویرایش تمرکز دارند و راهنمایی‌هایی برای تفسیر اولیه نتایج ارائه می‌دهند. یادداشت‌های عیب‌یابی به چالش‌های متداول و راهکارهای عملی برای بهینه‌سازی عملکرد در انواع سلولی می‌پردازند.

روش پژوهش

پروتکل شامل طراحی راهنما، سنتز درون‌کیسه‌ای مولکول‌های RNA و الکتروپوریشن برای تحویل موقت است. مراحل مدیریت و بازیابی سلول و خوانش‌های استاندارد جزئی می‌شوند.

محدودیت‌ها

محدودیت‌ها در متن گزارش نشده‌اند.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های بنیادی چسبنده و معلق
مداخله/مواجهه
ویرایش پایه از طریق الکتروپوریشن
مقایسه
مورد مقایسه گزارش نشده است
حجم نمونه
گزارش نشده است

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Base editingCRISPR/Cas9ElectroporationEx vivo Gene TherapyPrecise editingRNA delivery
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Integrated Workflow for Culturing and AI-Based Profiling of Mouse Intestinal Epithelium.

Two-dimensional (2D) culture systems are powerful in vitro tools that have revolutionized the study of intestinal stem cell biology. These culture systems derived from mouse intestinal and colonic epithelia enable the modeling of tissue architecture, barrier function, and disease mechanisms under physiologically relevant conditions. This protocol details methods for isolating and maintaining mouse intestinal crypts as 2D monolayers. Mo…