PubMed چکیده/رکورد

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptional and epigenomic network analysis. The protocol supports high-viability floating iMG production, compatibility with pooled CRISPR perturbation approaches, and downstream multiomic profiling, including single-cell RNA sequencing, chromatin accessibility assays, and proteomics. Detailed procedures are provided for iPSC maintenance, hematopoietic progenitor cell generation, microglial maturation, functional genomics integration, and quality control.

نتیجه فارسی

این فصل یک پروتکل استاندارد و قابل تکرار برای تولید میکروگلیای انسانی از سلول‌های بنیادی پلاسمیدی (iPSC) ارائه می‌دهد. این روش برای تحلیل‌های ترنسکریپتونی و اپی‌ژنومیک طراحی شده و با رویکردهای CRISPR و پروفایل‌سازی چندآمیتیک سازگار است.

  • تولید iMG با زیست‌فراوانی بالا و سازگار با perturbation CRISPR گروهی.
  • پروتکل برای تحلیل‌های ترنسکریپتونی و اپی‌ژنومیک طراحی شده است.
  • شامل مراحل حفظ iPSC، تولید سلول‌های پیش‌ساز خونی و بلوغ میکروگلیا است.
  • شامل کنترل کیفیت برای اطمینان از عملکرد سلول‌هاست.

ترجمه فارسی چکیده

میکروگلیای مشتق شده از سلول‌های بنیادی پلاسمیدی انسانی (iMG) یک سیستم آزمایشگاهی درون‌کشتگی برای مطالعه زیست‌شناسی میکروگلیای انسانی، التهاب عصبی و مکانیسم‌های ریسک ژنتیکی مرتبط با بیماری‌های عصبی فراهم می‌کنند. این فصل یک پروتکل استاندارد، مقیاس‌پذیر و قابل تکرار برای تفاوت‌بخشی سلول‌های بنیادی پلاسمیدی انسانی به سلول‌های میکروگلیا-مانند عملکردی را توصیف می‌کند، با تأکید ویژه بر کاربردها در تحلیل شبکه‌های ترنسکریپتونی و اپی‌ژنومیک. پروتکل از تولید iMG شناور با زیست‌فراوانی بالا، سازگاری با رویکردهای perturbation CRISPR گروهی و پروفایل‌سازی چندآمیتیک پایین‌دست، از جمله توالی‌یابی RNA سلول واحد، آزمون‌های دسترسی کروماتین و پروتئومیک پشتیبانی می‌کند. مراحل دقیقی برای حفظ iPSC، تولید سلول‌های پیش‌ساز خونی، بلوغ میکروگلیا، ادغام ژنومیک عملکردی و کنترل کیفیت ارائه شده است.

روش پژوهش

این فصل یک پروتکل استاندارد و قابل تکرار برای تفاوت‌بخشی سلول‌های بنیادی پلاسمیدی انسانی به سلول‌های میکروگلیا-مانند عملکردی را توصیف می‌کند. مراحل دقیقی برای حفظ iPSC، تولید سلول‌های پیش‌ساز خونی، بلوغ میکروگلیا، ادغام ژنومیک عملکردی و کنترل کیفیت ارائه شده است.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های گزارش شده در متن شامل عدم ذکر زمان‌بندی دقیق یا تعداد مراحل است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های بنیادی پلاسمیدی انسانی (iPSC)
مداخله/مواجهه
تفاوت‌بخشی به سلول‌های میکروگلیا-مانند عملکردی (iMG)
مقایسه
عدم ذکر مقایسه‌گر مشخص
حجم نمونه
عدم ذکر اندازه نمونه

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

ATAC-seqCRISPR screeningEpigenomicsFunctional genomicsPerturb-seqSingle-cell RNA sequencingStem cell differentiationTranscriptional networksiPSC-derived microglia
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…

PubMed2027

An Integrated Workflow for Culturing and AI-Based Profiling of Mouse Intestinal Epithelium.

Two-dimensional (2D) culture systems are powerful in vitro tools that have revolutionized the study of intestinal stem cell biology. These culture systems derived from mouse intestinal and colonic epithelia enable the modeling of tissue architecture, barrier function, and disease mechanisms under physiologically relevant conditions. This protocol details methods for isolating and maintaining mouse intestinal crypts as 2D monolayers. Mo…