PubMed چکیده/رکورد

Mapping Labile Fe2+ and Fe3+ in Living Arabidopsis thaliana Roots: Imaging and Quantification.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Iron (Fe) is involved in numerous key physiological processes due to its transfer or gain electron capacity. However, in excess, Fe is toxic to cells. The understanding of mechanisms governing its homeostasis requires imaging techniques capable of localizing and quantifying Fe and its redox state in situ. The Perls-DAB histochemical staining is a widely used method for visualizing Fe at a cellular level. Other advanced approaches, such as micro X-ray fluorescence and X-ray absorption near-edge structure spectroscopy, also provide information on the spatial distribution and oxidation state of Fe. However, all of these methods require sample fixation before observing Fe localization, which can introduce biases in the results. Recent development in synthetic fluorescent probes now enables the real-time visualization of ferrous (Fe2+) and ferric (Fe3+) forms in living roots, offering a robust and user-friendly approach to study Fe redox distribution in planta. This live imaging approach provides access to Fe dynamics and enables semi-quantitative analyses, thereby opening new avenues for Fe homeostasis research. This chapter provides detailed protocols for applying these methods in Arabidopsis roots.

نتیجه فارسی

این فصل روش‌های جدیدی را برای مشاهده و کمی‌سازی آهن دوظرفیتی و سه‌ظرفیتی در ریشه‌های زنده گیاه *Arabidopsis thaliana* معرفی می‌کند. این روش‌ها به جای ثابت‌سازی نمونه، از پروب‌های فلورسنت مصنوعی استفاده می‌کنند تا دینامیک‌های آهن را در زمان واقعی و با دقت بیشتری بررسی کنند.

  • آهن در مقادیر زیاد سمی است و نیاز به درک دقیق مکانیسم‌های تنظیم آن وجود دارد.
  • روش‌های قدیمی نیازمند ثابت‌سازی نمونه بودند که می‌توانست نتایج را سوگیری کند.
  • پروب‌های فلورسنت مصنوعی امکان مشاهده لحظه‌ای آهن در ریشه‌های زنده را فراهم می‌کنند.
  • این رویکرد به تحلیل نیمه‌کمی از دینامیک‌های آهن در گیاه کمک می‌کند.

ترجمه فارسی چکیده

آهن (Fe) در فرآیندهای فیزیولوژیک کلیدی نقش دارد، اما در مقادیر زیاد سمی است. درک مکانیسم‌های تنظیم آن نیازمند تکنیک‌های تصویربرداری است که بتوانند آهن و حالت اکسایشی آن را در محل و به صورت کمی تعیین کنند. روش‌های متداول مانند رنگ‌آمیزی هیستوشیمیایی Perls-DAB یا روش‌های پیشرفته‌ای مانند فلورسنس‌سنجی میکرو X-ray و طیف‌سنجی جذب نزدیک لبه X-ray، نیازمند ثابت‌سازی نمونه هستند که می‌تواند باعث سوگیری نتایج شود. توسعه اخیر پروب‌های فلورسنت مصنوعی، امکان مشاهده لحظه‌ای فرم‌های آهن دوظرفیتی (Fe2+) و سه‌ظرفیتی (Fe3+) در ریشه‌های زنده را فراهم کرده است. این رویکرد تصویربرداری زنده، دسترسی به دینامیک‌های آهن و امکان تحلیل نیمه‌کمی را فراهم می‌کند. این فصل پروتکل‌های دقیقی برای اعمال این روش‌ها در ریشه‌های *Arabidopsis* ارائه می‌دهد.

روش پژوهش

این فصل پروتکل‌های دقیقی برای اعمال روش‌های تصویربرداری زنده و استفاده از پروب‌های فلورسنت مصنوعی در ریشه‌های *Arabidopsis thaliana* ارائه می‌دهد.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های روش‌ها در متن گزارش نشده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
ریشه‌های زنده گیاه *Arabidopsis thaliana*.
مداخله/مواجهه
استفاده از پروب‌های فلورسنت مصنوعی برای مشاهده آهن دوظرفیتی و سه‌ظرفیتی.
مقایسه
روش‌های هیستوشیمیایی Perls-DAB و طیف‌سنجی جذب نزدیک لبه X-ray (که نیازمند ثابت‌سازی نمونه هستند).
حجم نمونه
گزارش نشده است.

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Arabidopsis thalianaFluorescence microscopyFluorescent probesIronQuantitative fluorescence analysisRedox
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…