PubMed چکیده/رکورد

EdU-Based Quantitative Analysis of Cell Proliferation in Arabidopsis Root Meristems.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

The division of a mother cell into two daughter cells is a fundamental process in biology, involving the transfer of genomic information to the next generation of cells. In plant roots, cell divisions occur in the root apical meristem, a specialized tissue located at the plant's root tip. Cell proliferation rates in the root apical meristem shape root growth, thereby contributing to general development as well as the acclimatization to stressful environmental conditions through phenotypic plasticity. Here, we present a protocol for the microscopical analysis of cell proliferation in Arabidopsis thaliana root meristems by 5-ethynyl-2'-deoxyuridine (EdU) staining. EdU, a thymine-analog, is incorporated into newly synthesized DNA of proliferative cells during the S-phase of the cell cycle. Subsequently, EdU-containing nuclei can be labeled with a fluorophore and detected by confocal laser scanning microscopy. The combination of the EdU assay with cell wall staining enables the quantification of root meristem architecture parameters and cell division activity from microscopic images. Together, this can elucidate how root meristems respond to changes in environmental conditions or address fundamental questions of developmental plant biology.

نتیجه فارسی

این مقاله یک پروتکل میکروسکوپی را برای اندازه‌گیری فعالیت تقسیم سلولی در منشأ ریشه‌های آربیدوپسیس با استفاده از رنگ‌آمیزی EdU توصیف می‌کند. این روش به محققان اجازه می‌دهد تا ساختار منشأ ریشه و نرخ تقسیم سلولی را در شرایط مختلف محیطی بررسی کنند.

  • EdU یک آنالوگ تیمیدین است که در DNA نو synthesized جدید سلول‌های در حال تقسیم ادغام می‌شود.
  • هسته‌های حاوی EdU با فلوئوروفور برچسب‌گذاری شده و با میکروسکوپ کانفوکال تشخیص داده می‌شوند.
  • ترکیب EdU با رنگ‌آمیزی دیواره سلولی امکان اندازه‌گیری پارامترهای معماری منشأ ریشه را فراهم می‌کند.
  • این روش می‌تواند برای بررسی پاسخ منشأ ریشه به تغییرات محیطی و سوالات توسعه‌ای استفاده شود.

ترجمه فارسی چکیده

تقسیم یک سلول مادر به دو سلول فرزند، فرآیندی بنیادی در زیست‌شناسی است که شامل انتقال اطلاعات ژنومیک به نسل بعدی سلول‌ها می‌شود. در ریشه‌های گیاهی، تقسیم سلولی در منشأ ریشه‌ای (root apical meristem)، بافت تخصصی در نوک ریشه رخ می‌دهد. نرخ‌های رشد سلولی در منشأ ریشه‌ای شکل‌دهنده رشد ریشه هستند و از طریق پلاستیسیسم فنوتیپی به توسعه کلی و سازگاری با شرایط محیطی استرس‌زا کمک می‌کنند. در اینجا، ما یک پروتکل برای تحلیل میکروسکوپی رشد سلولی در منشأ ریشه‌های آربیدوپسیس تالیانا با رنگ‌آمیزی 5-اتینیل-2'-دئوکسی‌یوریدین (EdU) ارائه می‌دهیم. EdU، آنالوگ تیمیدین، در فاز S چرخه سلولی در سلول‌های در حال تقسیم در DNA نو synthesized جدید ادغام می‌شود. به دنبال آن، هسته‌های حاوی EdU می‌توانند با یک فلوئوروفور برچسب‌گذاری شده و با میکروسکوپ اسکن لیزر کانفوکال تشخیص داده شوند. ترکیب آزمون EdU با رنگ‌آمیزی دیواره سلولی امکان اندازه‌گیری پارامترهای معماری منشأ ریشه و فعالیت تقسیم سلولی از تصاویر میکروسکوپی را فراهم می‌کند. به طور همگون، این می‌تواند elucidate (توضیح دهد) که منشأ ریشه‌ها چگونه به تغییرات شرایط محیطی پاسخ می‌دهند یا سوالات بنیادی زیست‌شناسی توسعه گیاهان را پاسخ دهد.

روش پژوهش

پروتکل شامل رنگ‌آمیزی EdU در سلول‌های در حال تقسیم و برچسب‌گذاری هسته‌ها با فلوئوروفور است. تصاویر میکروسکوپی با میکروسکوپ اسکن لیزر کانفوکال گرفته می‌شوند.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های گزارش شده شامل نیاز به تمرین برای انجام دقیق پروتکل و وابستگی به کیفیت تصاویر میکروسکوپی است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
منشأ ریشه‌های آربیدوپسیس تالیانا
مداخله/مواجهه
رنگ‌آمیزی EdU
مقایسه
ندارد
حجم نمونه
ندارد

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Arabidopsis thalianaCell cycleCell divisionEdUMicroscopyRoot developmentRoot growthRoot meristemS-phase
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…