PubMed چکیده/رکورد

High Immunophenotyping of Human PBMCs Using Lyophilized Antibodies.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Immunophenotyping of human peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) is a critical technique for understanding immune responses in both health and disease. Traditionally, this process relies on the use of liquid antibody cocktails, which are time-consuming to prepare, prone to laboratory error, and have limited shelf lives. Recent advancements in lyophilization of antibodies and other reagents have addressed these challenges by enhancing reagent stability, extending shelf life, and simplifying transport and storage. Dried antibody cocktails have been shown to perform comparably to liquid cocktails in flow cytometry assays while reducing preparation time and minimizing handling errors. This review focuses on the use of lyophilized reagents for high-dimensional immunophenotyping of human PBMCs, discussing their advantages in large-scale studies, global health initiatives, and clinical research. By streamlining immune profiling workflows, lyophilized reagents have the potential to improve accessibility and facilitate the adoption of immunophenotyping in resource-limited settings.

نتیجه فارسی

این مرور به مزایای استفاده از آنتی‌بادی‌های خشک‌شده برای بالا‌رتبه‌بندی ایمنوفنوتیپ سلول‌های پلاسمای خونی انسانی می‌پردازد. مواد خشک‌شده پایداری بهتری نسبت به مواد مایع دارند و آماده‌سازی آن‌ها سریع‌تر است. این روش می‌تواند در تحقیقات بالینی و محیط‌های با منابع محدود کاربرد داشته باشد.

  • آنتی‌بادی‌های خشک‌شده عملکردی مشابه با آنتی‌بادی‌های مایع در سیتومتری جریان دارند.
  • خشک‌کردن آنتی‌بادی‌ها زمان آماده‌سازی را کاهش و خطاهای دستی را به حداقل می‌رساند.
  • مواد خشک‌شده پایداری بهتری نسبت به مواد مایع دارند و عمر مفید طولانی‌تری دارند.
  • این روش می‌تواند در تحقیقات بالینی و محیط‌های با منابع محدود کاربرد داشته باشد.

ترجمه فارسی چکیده

بالا‌رتبه‌بندی ایمنوفنوتیپ سلول‌های پلاسمای خونی انسانی (PBMC) یک تکنیک حیاتی برای درک پاسخ‌های ایمنی در سلامت و بیماری است. به‌طور سنتی، این فرآیند به استفاده از «کوکتل‌های آنتی‌بادی مایع» وابسته است که آماده‌سازی آن‌ها زمان‌بر است، در معرض خطای آزمایشگاهی قرار دارند و عمر مفید محدودی دارند. پیشرفت‌های اخیر در خشک‌کردن آنتی‌بادی‌ها و سایر مواد شیمیایی، چالش‌های این روش را با افزایش پایداری مواد، تمدید عمر مفید و ساده‌سازی حمل‌ونقل و ذخیره‌سازی حل کرده‌اند. کوکتل‌های آنتی‌بادی خشک‌شده در آزمون‌های سیتومتری جریان عملکردی مشابهی با کوکتل‌های مایع داشته‌اند، در حالی که زمان آماده‌سازی را کاهش و خطاهای دستی را به حداقل رسانده‌اند. این مرور به استفاده از مواد شیمیایی خشک‌شده برای بالا‌رتبه‌بندی ایمنوفنوتیپ انسانی PBMC می‌پردازد و مزایای آن را در مطالعات مقیاس بزرگ، ابتکارات سلامت جهانی و تحقیقات بالینی بررسی می‌کند. با ساده‌سازی جریان‌های کاری پروفایل‌سازی ایمنی، مواد شیمیایی خشک‌شده پتانسیل بهبود دسترسی و تسهیل پذیرش بالا‌رتبه‌بندی ایمنوفنوتیپ در محیط‌هایی با منابع محدود را دارند.

روش پژوهش

این مقاله یک مرور ادبیات است که بر مزایای مواد شیمیایی خشک‌شده تمرکز دارد.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های این مرور در متن ارائه نشده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های پلاسمای خونی انسانی (PBMC)
مداخله/مواجهه
آنتی‌بادی‌های خشک‌شده
مقایسه
آنتی‌بادی‌های مایع
حجم نمونه
عدم گزارش

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Dried antibody cocktailFlow cytometryImmunophenotypingLyophilizationPeripheral blood mononuclear cells
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…