PubMed چکیده/رکورد

Measurable Residual Disease.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Measurable residual disease (MRD) serves as a critical biomarker of prognosis, treatment efficacy, and clinical outcome. It captures the presence of residual tumor cells below the detection threshold of conventional microscopy. Multiparametric flow cytometry (MFC) offers a rapid, cost-efficient, and widely applicable platform for MRD detection through leukemia-associated immunophenotypes (LAIPs) and deviation-from-normal (DfN) antigen maturation patterns. This technique underpins a wide range of clinical applications, including risk stratification, therapeutic decision-making, and post-transplant surveillance. This chapter outlines essential technical parameters for achieving high-sensitivity MRD detection across hematologic malignancies such as B-ALL, T-ALL, AML, MM, and CLL. Key topics covered include material required, reagent preparation, antibody panel design, sample processing and acquisition, gating strategies, and illustrative examples. Special emphasis is given to adaptations necessary for MRD monitoring following CD19-targeted therapies in B-ALL. By integrating rigorous methodology with evolving innovations, MFC continues to advance as a precise and expedient tool for MRD assessment, contributing significantly to personalized treatment strategies.

نتیجه فارسی

بیماری باقی‌مانده قابل اندازه‌گیری (MRD) یک نشانگر حیاتی برای پیش‌بینی و اثربخشی درمان است. پلاسمای جریان چندپارامتری (MFC) یک روش سریع و اقتصادی برای تشخیص MRD است که از الگوهای بلوغ آنتی‌ژن استفاده می‌کند. این فصل پارامترهای فنی و موضوعات کلیدی برای تشخیص MRD در سرطان‌های خونی را پوشش می‌دهد و بر سازگاری‌های لازم برای نظارت پس از درمان‌های هدف‌دار CD19 در B-ALL تمرکز دارد.

  • MRD سلول‌های توموری باقی‌مانده را در دام‌هایی که زیر میکروسکوپ معمولی قابل تشخیص نیستند، اندازه‌گیری می‌کند.
  • MFC از پرفیل‌های ایمنوفنوتیپی مرتبط با لوسمی و الگوهای DfN برای تشخیص MRD استفاده می‌کند.
  • این فصل پارامترهای فنی و موضوعات کلیدی برای تشخیص MRD در سرطان‌های خونی را پوشش می‌دهد.
  • تمرکز ویژه‌ای بر سازگاری‌های لازم برای نظارت MRD پس از درمان‌های هدف‌دار CD19 در B-ALL است.

ترجمه فارسی چکیده

بیماری باقی‌مانده قابل اندازه‌گیری (MRD) به عنوان یک نشانگر زیستی حیاتی برای پیش‌بینی، اثربخشی درمان و نتیجه بالینی عمل می‌کند. این روش حضور سلول‌های توموری باقی‌مانده را در دام‌هایی که زیر حد تشخیص میکروسکوپ معمولی قرار دارند، ثبت می‌کند. پلتفرم پلاسمای جریان چندپارامتری (MFC) با استفاده از پرفیل‌های ایمنوفنوتیپی مرتبط با لوسمی و الگوهای بلوغ آنتی‌ژن از نرمال (DfN) یک پلتفرم سریع، اقتصادی و کاربردی گسترده برای تشخیص MRD ارائه می‌دهد. این تکنیک پایه‌ی کاربردهای بالینی گسترده‌ای از جمله رتبه‌بندی ریسک، تصمیم‌گیری درمانی و نظارت پس از پیوند است. این فصل پارامترهای فنی ضروری برای دستیابی به تشخیص MRD با حساسیت بالا در سرطان‌های خونی مانند B-ALL، T-ALL، AML، MM و CLL را تشریح می‌کند. موضوعات کلیدی شامل مواد مورد نیاز، آماده‌سازی رژیم، طراحی پنل آنتی‌بادی، پردازش و استخراج نمونه، استراتژی‌های دروازه‌بندی و مثال‌های توضیحی است. تمرکز ویژه‌ای بر سازگاری‌های لازم برای نظارت MRD پس از درمان‌های هدف‌دار CD19 در B-ALL داده شده است. با ادغام روش‌شناسی دقیق با نوآوری‌های در حال تکامل، MFC به عنوان یک ابزار دقیق و سریع برای ارزیابی MRD پیشرفت می‌کند و به استراتژی‌های درمان شخصی‌سازی‌شده کمک شایانی می‌کند.

روش پژوهش

فصل پارامترهای فنی ضروری برای دستیابی به تشخیص MRD با حساسیت بالا در سرطان‌های خونی را تشریح می‌کند. موضوعات کلیدی شامل مواد مورد نیاز، آماده‌سازی رژیم، طراحی پنل آنتی‌بادی، پردازش و استخراج نمونه، و استراتژی‌های دروازه‌بندی است.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های گزارش شده در متن شامل عدم ذکر حساسیت خاص یا دقت آماری است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سرطان‌های خونی شامل B-ALL، T-ALL، AML، MM و CLL.
مداخله/مواجهه
تشخیص MRD با استفاده از پلاسمای جریان چندپارامتری (MFC).
مقایسه
تشخیص MRD با میکروسکوپ معمولی (که دام تشخیصی آن بالاتر است).
حجم نمونه
گزارش نشده.

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Acute leukemiaChronic lymphocytic leukemiaFlow cytometryMeasurable residual diseaseMultiple myeloma
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…