PubMed چکیده/رکورد

Immunophenotypic Assessment of Natural Killer Cell Degranulation and Monocyte Function from Cryopreserved Peripheral Blood Mononuclear Cells.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Natural killer (NK) cells and monocytes are central components of the innate immune system, playing critical roles in host defense, immune surveillance, and inflammation. Functional alterations in these cell populations are implicated in cancer, infectious diseases, cardiovascular disease, and responses to environmental and psychosocial stressors. Accurate measurement of NK cell and monocyte distribution and function is therefore essential for both basic and translational immunology. In large-scale or longitudinal studies, cryopreserved peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) are commonly used to enable standardized analyses across time and sites; however, cryopreservation and thawing can adversely affect cell viability and function. This chapter presents a reproducible protocol for the cryopreservation, thawing, and functional assessment of NK cells and monocytes from human PBMCs. PBMCs are cryopreserved using a 9:1 ratio of fetal bovine serum (FBS) and dimethyl sulfoxide (DMSO), allowing long-term storage at ultra-low temperatures while preserving cellular integrity. The thawing process utilizes a nuclease to minimize cell clumping, enhancing cell recovery and viability. Following thawing, PBMCs are prepared for downstream functional assays. NK cell function is assessed using a standard degranulation assay following coculture with K562 target cells, providing a robust measure of cytotoxic capacity. Together, this protocol offers a practical guide for the reliable measurement of NK cell and monocyte distribution and function from cryopreserved PBMCs, supporting high-quality immunological analyses in clinical and population-based research.

نتیجه فارسی

این فصل یک پروتکل استاندارد برای منجمد‌سازی، گرم کردن و ارزیابی عملکرد سلول‌های طبیعی قاتل و مونوسیت‌ها از PBMC انسانی ارائه می‌دهد. این روش از نسبت ۹:۱ FBS و DMSO برای منجمد‌سازی و آنزیم نوکلئاز برای جلوگیری از انبوهی سلولی در گرم کردن استفاده می‌کند. عملکرد NK با کشت مشترک با سلول‌های هدف K562 و آزمون تخلیه ارزیابی می‌شود.

  • منجمد‌سازی PBMC با نسبت ۹:۱ FBS و DMSO انجام می‌شود.
  • استفاده از آنزیم نوکلئاز در فرآیند گرم کردن برای کاهش انبوهی سلولی.
  • عملکرد NK با آزمون تخلیه پس از کشت مشترک با سلول‌های هدف K562 ارزیابی می‌شود.
  • این پروتکل برای تحلیل‌های ایمنولوژی بالینی و جمعیتی طراحی شده است.

ترجمه فارسی چکیده

سلول‌های طبیعی قاتل (NK) و مونوسیت‌ها اجزای اصلی سیستم ایمنی درونی هستند که نقش‌های حیاتی در دفاع میزبان، نظارت ایمنی و التهاب ایفا می‌کنند. تغییرات عملکردی در این جمعیت‌های سلولی در سرطان، بیماری‌های عفونی، بیماری‌های قلبی عروقی و پاسخ‌ها به استرس‌های محیطی و روان‌اجتماعی دخیل هستند. اندازه‌گیری دقیق توزیع و عملکرد NK و مونوسیت‌ها برای ایمنولوژی پایه و ترجمه‌ای ضروری است. در مطالعات مقیاس بزرگ یا طولی، سلول‌های خونی لنفاوی منوسیت‌دار (PBMC) برای تحلیل‌های استاندارد در طول زمان و سایت‌ها استفاده می‌شوند، اما منجمد‌سازی و گرم کردن می‌تواند بر زنده‌مانی و عملکرد سلولی تأثیر منفی بگذارد. این فصل یک پروتکل قابل تکرار برای منجمد‌سازی، گرم کردن و ارزیابی عملکرد NK و مونوسیت‌ها از PBMC انسانی ارائه می‌دهد. PBMC‌ها با نسبت ۹:۱ سرم جنین گاوی (FBS) و دی‌متیل سولفوکسید (DMSO) منجمد می‌شوند تا ذخیره طولانی‌مدت در دماهای بسیار پایین با حفظ یکپارچگی سلولی امکان‌پذیر باشد. فرآیند گرم کردن از یک آنزیم نوکلئاز برای کاهش انبوهی سلولی استفاده می‌کند که بازیابی و زنده‌مانی سلول را افزایش می‌دهد. پس از گرم کردن، PBMC‌ها برای آزمون‌های عملکردی پایین‌دست آماده می‌شوند. عملکرد NK با استفاده از یک آزمون تخلیه استاندارد پس از کشت مشترک با سلول‌های هدف K562 ارزیابی می‌شود که یک معیار قوی از ظرفیت سیتوتوکسیک ارائه می‌دهد. این پروتکل راهنمایی عملی برای اندازه‌گیری قابل اعتماد توزیع و عملکرد NK و مونوسیت‌ها از PBMC منجمد شده ارائه می‌دهد.

روش پژوهش

PBMC‌ها با نسبت ۹:۱ FBS و DMSO منجمد می‌شوند. گرم کردن با استفاده از آنزیم نوکلئاز انجام می‌شود. عملکرد NK با آزمون تخلیه پس از کشت مشترک با سلول‌های هدف K562 ارزیابی می‌شود.

محدودیت‌ها

محدودیت‌ها در متن گزارش نشده‌اند.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های خونی لنفاوی منوسیت‌دار انسانی (PBMC)
مداخله/مواجهه
منجمد‌سازی با نسبت ۹:۱ FBS و DMSO، گرم کردن با آنزیم نوکلئاز
مقایسه
در متن گزارش نشده است.
حجم نمونه
در متن گزارش نشده است.

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Cryopreserved PBMCsDegranulationFlow cytometryImmunophenotypingNK cells
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…