PubMed چکیده/رکورد

Cellular remodeling during reversible life-stage transition in sessile ciliates: Genomic and transcriptomic insights.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Unraveling mechanisms driving dramatic life-stage transitions in response to environmental stress is central to understanding cellular adaptation. We studied a distinctive group of sessile ciliates that undergo profound morphological and organellar remodeling when transitioning from sessile trophonts to motile telotrochs. We generated chromosome-level genomes for two colonial species (Campanella sinica, Epistylis hentscheli) and one solitary species (Vorticella campanula), revealing genome sizes of 41.30 to 60.37 Mb. Notably, minichromosomes (10 to 100 kb) represent a shared, distinct chromosomal architecture across all three species. We constructed a transcriptional atlas by profiling five transitional stages, revealing core gene sets linked to transcriptional regulation, cilia, cytoskeletal dynamics, and metabolism. Intermediate stages converge on conserved genes driving structural and energetic turnover, including polyubiquitin and the mitochondrial regulator CHCHD2. Furthermore, we uncovered metabolic reprogramming and active spatial mobilization of mitochondria tailored to fuel these extreme morphological shifts. During structural remodeling, the mitochondrial genome exhibits asymmetric regulation-coordinating the upregulation of translational and early respiratory machineries with the downregulation of terminal electron transport potentially mitigating oxidative stress. Crucially, in vivo imaging physically corroborates this transcriptomic priming, revealing a marked increase in mitochondrial density and their targeted redistribution to regions of high ATP demand. Conversely, during stalk biosynthesis, organellar regulation selectively upregulates the mitochondrial protein ymf66 to sustain prolonged translational and energetic demands. Ultimately, our findings highlight how ciliates integrate global transcriptomic shifts with organelle-specific spatial and metabolic fine-tuning to meet the precise mechanical requirements of complex life-cycle transitions.

نتیجه فارسی

این مطالعه ژنوم‌های سطح کروموزومی برای سه گونه سیت‌های ایستا را تولید کرد و نشان داد که مینیکروموزوم‌ها یک معماری کروموزومی مشترک هستند. پروفایل‌های ترنسکریپتومیک پنج مرحله گذار، بازطراحی متابولیک و متمرکزسازی مکانی میتوکندری را در پاسخ به تغییرات مورفولوژیک آشکار کردند. تصویربرداری در vivo افزایش چگالی میتوکندری و توزیع هدفمند آن‌ها را تأیید کرد.

  • ژنوم‌های سطح کروموزومی برای سه گونه سیت‌های ایستا تولید شدند.
  • مینیکروموزوم‌ها یک معماری کروموزومی مشترک در تمام سه گونه هستند.
  • مراحل میانی گذار بر ژن‌های حفظ‌شده متمرکز هستند.
  • بازطراحی متابولیک و متمرکزسازی مکانی میتوکندری برای سوخت‌رسانی آشکار شد.
  • تصویربرداری در vivo افزایش چگالی میتوکندری را تأیید کرد.

ترجمه فارسی چکیده

درک مکانیسم‌های راننده گذارهای دراماتیک مراحل زندگی در پاسخ به استرس محیطی، مرکز درک سازگاری سلولی است. ما گروهی متمایز از سیت‌های ایستا را مطالعه کردیم که در گذار از تروفونت‌های ایستا به تلوتروخ‌های متحرک، بازسازی‌های عمیق مورفولوژیک و اندامکی را تجربه می‌کنند. ما ژنوم‌های سطح کروموزومی برای دو گونه کلونی (Campanella sinica، Epistylis hentscheli) و یک گونه تکی (Vorticella campanula) تولید کردیم که اندازه ژنوم‌ها را ۴۱.۳۰ تا ۶۰.۳۷ مگابایت نشان داد. به طور قابل توجهی، مینیکروموزوم‌ها (۱۰ تا ۱۰۰ کیلوبایت) معماری کروموزومی مشترک و متمایزی را در تمام سه گونه نشان می‌دهند. ما یک اطلس ترنسکریپتومیک با پروفایل‌دهی پنج مرحله گذار ساختیم که مجموعه‌های ژنی هسته‌ای را مرتبط با تنظیم ترنسکریپتونی، سیلی، دینامیک سیتوسکلت و متابولیسم آشکار کرد. مراحل میانی بر ژن‌های حفظ‌شده متمرکز می‌شوند که راننده‌های چرخش ساختاری و انرژی هستند، از جمله پلی‌یوبریتینین و تنظیم‌کننده میتوکندری CHCHD2. علاوه بر این، ما بازطراحی متابولیک و متمرکزسازی فعال مکانی میتوکندری را که برای سوخت‌رسانی به این تغییرات مورفولوژیک افراطی تنظیم شده‌اند، آشکار کرد. در بازسازی ساختاری، ژنوم میتوکندری تنظیم نامتقارن را نشان می‌دهد که هم‌افزایی دستگاه‌های ترجمه‌ای و تنفس اولیه را با کاهش‌دهی انتقال الکترون نهایی هماهنگ می‌کند که احتمالاً استرس اکسیداتیو را کاهش می‌دهد. به طور حیاتی، تصویربرداری در vivo این آماده‌سازی ترنسکریپتومیک را به طور فیزیکی تأیید می‌کند که افزایش چشمگیر چگالی میتوکندری و توزیع هدفمند آن‌ها به مناطق با تقاضای بالای ATP را آشکار می‌کند. در مقابل، در حین بیوسنتز ساقه، تنظیم اندامکی به طور انتخابی پروتئین میتوکندری ymf66 را برای تأمین تقاضاهای طولانی‌مدت ترجمه‌ای و انرژی بالا بالا می‌برد. در نهایت، یافته‌های ما نشان می‌دهند که سیت‌ها چگونه تغییرات ترنسکریپتومی جهانی را با تنظیم دقیق مکانی و متابولیک مخصوص اندامک‌ها برای برآورده کردن نیازهای مکانیکی دقیق گذارهای پیچیده چرخه زندگی ادغام می‌کنند.

روش پژوهش

ژنوم‌های سطح کروموزومی برای دو گونه کلونی و یک گونه تکی تولید شد. اطلس ترنسکریپتومیک با پروفایل‌دهی پنج مرحله گذار ساخته شد. تصویربرداری در vivo برای تأیید مکانی میتوکندری انجام شد.

محدودیت‌ها

محدودیت‌ها در متن گزارش نشده‌اند.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سه گونه سیت‌های ایستا: Campanella sinica، Epistylis hentscheli و Vorticella campanula.
مداخله/مواجهه
گذار از تروفونت‌های ایستا به تلوتروخ‌های متحرک.
مقایسه
مراحل میانی گذار.
حجم نمونه
تعداد نمونه در متن گزارش نشده است.

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Campanella sinicaEpistylis hentscheliVorticella campanulalife-stage transitionsessile ciliates
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

CRISPR/Cas Systems: Biological Basis and Genome Editing Applications.

Clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR) and associated (Cas) systems have revolutionized the field of genome engineering by providing versatile, efficient, and programmable tools for precise genetic manipulation. Originally identified as an adaptive immune mechanism in prokaryotes, CRISPR/Cas systems have been extensively repurposed for a wide range of applications across molecular biology, biotechnology, and…

PubMed2027

Enrichment of Arabidopsis Plasma Membrane Proteins by Sequential Differential Centrifugation.

The plasma membrane (PM) is the primary interface between plant cells and their environment, and its resident proteins mediate key processes such as extracellular signal perception and downstream cellular reprogramming. Yet, PM proteins are typically underrepresented in total protein extracts, and existing enrichment strategies are often laborious and require extensive optimization. Here, a simple and robust workflow is described for e…

PubMed2027

Epitope Tagging and Coimmunoprecipitation to Identify Viral Protein Interactors.

Affinity purification-mass spectrometry (AP-MS) is a powerful proteomic approach for dissecting the interaction network between virus and host. Traditional AP-MS employs overexpression of viral proteins as baits to enrich host interactors. However, overexpressed viral proteins may mislocalize to inappropriate cellular compartments and trigger endoplasmic reticulum stress by overwhelming the protein-folding machinery, which leads to fal…