PubMed چکیده/رکورد

Nucleofection-Based CRISPR/Cas Delivery in Human T Cells for Immunotherapy Applications.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Electroporation-based delivery of CRISPR/Cas systems has emerged as a powerful and versatile approach for gene editing in primary human T cells, enabling efficient, transient, and nonviral modification while minimizing genomic integration risks. This chapter focuses on the principles and practical implementation of electroporation (nucleofection) for the delivery of Cas9 ribonucleoprotein (RNP) complexes into human T cells, highlighting critical parameters that influence editing efficiency, cell viability, and scalability for research and clinical applications. We provide a comprehensive protocol for multiplex gene editing in primary human T cells using Cas9 RNP electroporation, including optimization of cell activation status, buffer composition, electroporation settings, and post-electroporation recovery. Particular emphasis is placed on strategies to achieve high-efficiency disruption of target loci such as TRAC and B2M, enabling the generation of edited T cell products with defined functional properties. As a representative application, we describe how this delivery platform can be integrated with chimeric antigen receptor (CAR) engineering to produce edited CAR-T cells, including universal "off-the-shelf" designs with reduced risks of graft-versus-host disease and immune rejection. Downstream evaluation methods, including multiparameter flow cytometry for assessing editing efficiency and immunophenotype, are also outlined.

نتیجه فارسی

این فصل روش‌های الکتروپوراسیون (نکلئوفکشن) را برای انتقال پیچیدگی‌های RNP کاس۹ به سلول‌های T انسانی توصیف می‌کند. پروتکل شامل بهینه‌سازی شرایط سلول و تنظیمات الکتروپوراسیون است و بر تولید سلول‌های T ویرایش‌شده با ویژگی‌های مشخص و سلول‌های CAR-T تمرکز دارد.

  • الکتروپوراسیون روشی برای انتقال RNP کاس۹ به سلول‌های T انسانی است.
  • پروتکل شامل بهینه‌سازی شرایط سلول و تنظیمات الکتروپوراسیون است.
  • هدف اختلال در محل‌های هدف مانند TRAC و B2M است.
  • این روش می‌تواند با مهندسی CAR برای تولید سلول‌های CAR-T ادغام شود.
  • ارزیابی با سیالاتومتری برای کارایی ویرایش انجام می‌شود.

ترجمه فارسی چکیده

الکتروپوراسیون به عنوان یک رویکرد قدرتمند و چندمنظوره برای ویرایش ژن در سلول‌های T انسانی اولیه ظهور کرده است که امکان اصلاح مؤثر، موقت و غیرویروسی را فراهم می‌کند و ریسک‌های ادغام ژنومیک را کاهش می‌دهد. این فصل بر اصول و پیاده‌سازی عملی الکتروپوراسیون (نکلئوفکشن) برای انتقال پیچیدگی‌های پروتئین‌های رنوکلیوئیدی (RNP) کاس۹ به سلول‌های T انسانی تمرکز دارد و پارامترهای حیاتی که بر کارایی ویرایش، زنده‌مانی سلول و مقیاس‌پذیری تأثیر می‌گذارند را برجسته می‌کند. ما یک پروتکل جامع برای ویرایش چندگانه ژن در سلول‌های T انسانی اولیه با استفاده از الکتروپوراسیون RNP کاس۹ ارائه می‌دهیم، شامل بهینه‌سازی وضعیت فعال‌سازی سلول، ترکیب بفر، تنظیمات الکتروپوراسیون و بازسازی پس از الکتروپوراسیون. تأکید ویژه‌ای بر استراتژی‌های برای دستیابی به اختلال با کارایی بالا در محل‌های هدف مانند TRAC و B2M قرار دارد که امکان تولید محصولات سلولی ویرایش‌شده با ویژگی‌های عملکردی مشخص را فراهم می‌کند. به عنوان یک کاربرد نمونه، ما توصیف می‌کنیم که این پلتفرم انتقال می‌تواند با مهندسی گیرنده آنتی‌ژن شبه‌ای (CAR) ادغام شود تا سلول‌های CAR-T ویرایش‌شده را تولید کند، شامل طراحی‌های «آماده‌سازی شده» جهانی با ریسک‌های کمتر بیماری گراون-درابر-میزوست و ردیت ایمنی. روش‌های ارزیابی پایین‌دست، از جمله سیالاتومتری چندپارامتری برای ارزیابی کارایی ویرایش و پرفنوتیپ ایمنی، نیز خلاصه شده‌اند.

روش پژوهش

این فصل یک پروتکل جامع برای ویرایش چندگانه ژن در سلول‌های T انسانی اولیه با استفاده از الکتروپوراسیون RNP کاس۹ ارائه می‌دهد. بهینه‌سازی شامل وضعیت فعال‌سازی سلول، ترکیب بفر و تنظیمات الکتروپوراسیون است.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های ذکر شده در متن شامل ریسک‌های ادغام ژنومیک و نیاز به بهینه‌سازی دقیق پارامترها برای کارایی و زنده‌مانی است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های T انسانی اولیه
مداخله/مواجهه
الکتروپوراسیون (نکلئوفکشن) برای انتقال پیچیدگی‌های RNP کاس۹
مقایسه
در متن ذکر نشده است
حجم نمونه
در متن ذکر نشده است

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

CRISPR/Cas9ElectroporationGene editingNonviral deliveryNucleofectionPrimary cellsRNP deliveryT cells
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…