PubMed چکیده/رکورد

Electroporation for High-Efficiency Delivery of CRISPR to Hematopoietic Cells.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Recent advances in genome editing technologies have enabled transformative therapeutic strategies for hematological disorders. Efficient implementation of these approaches requires reliable delivery of genome editing components into primary hematopoietic stem and progenitor cells (HSPCs), which are particularly sensitive and resistant to conventional transfection methods. Electroporation has emerged as the most widely used strategy for ex vivo delivery of genome editing reagents into CD34⁺ hematopoietic cells. Genome editing tools can be delivered in multiple formats, including plasmid DNA, messenger RNA (mRNA), and ribonucleoprotein (RNP) complexes. In HSPCs, mRNA- and RNP-based approaches are generally better tolerated than plasmid DNA and allow transient expression with reduced cytotoxicity. In this chapter, we describe optimized protocols for electroporation-based delivery of CRISPR/Cas9 RNP complexes and mRNA-encoded base editors into HSPCs using the Amaxa™ 4D-Nucleofector™ system. Detailed procedures are provided for cell preparation, guide RNA design, assembly of Cas9 RNPs, in vitro transcription and purification of base editor mRNA, electroporation parameters, and assessment of editing efficiency. Emphasis is placed on maximizing editing performance while preserving stem cell viability and functionality.

نتیجه فارسی

الکتروپوریشن به عنوان روشی مطمئن برای انتقال خارج از بدن اجزای ویرایش ژن به سلول‌های بنیادی و پیش‌ساز خونی (HSPC) شناخته می‌شود. این روش به طور خاص برای انتقال RNP‌های CRISPR/Cas9 و mRNA ویرایشگر پایه به سلول‌های CD34⁺ بهینه شده است. این فصل رویکردهای mRNA و RNP را به دلیل تحمل بهتر و بیان موقت، برخلاف DNA پلاسمیدی، ترجیح می‌دهد.

  • الکتروپوریشن رایج‌ترین روش برای انتقال خارج از بدن مواد ویرایش ژن به سلول‌های خونی است.
  • در HSPC، RNP‌ها و mRNAها به طور کلی بهتر از DNA پلاسمیدی تحمل می‌شوند.
  • این فصل پروتکل‌های بهینه‌شده برای سیستم Amaxa™ 4D-Nucleofector™ توصیف می‌کند.
  • تأکید بر حفظ پایداری و عملکرد سلول‌های بنیادی در حین ویرایش است.

ترجمه فارسی چکیده

پیشرفت‌های اخیر در فناوری‌های ویرایش ژن منجر به استراتژی‌های درمانی مبتنی بر ویرایش ژن برای اختلالات خونی شده است. پیاده‌سازی مؤثر این رویکردها نیازمند انتقال قابل اعتماد اجزای ویرایش ژن به سلول‌های بنیادی و پیش‌ساز خونی (HSPC) است که به دلیل حساسیت و مقاومت به روش‌های انتقال معمول، دشوار هستند. الکتروپوریشن به عنوان رایج‌ترین استراتژی برای انتقال خارج از بدن مواد ویرایش ژن به سلول‌های خونی CD34⁺ ظهور کرده است. ابزارهای ویرایش ژن می‌توانند در قالب‌های مختلفی از جمله DNA پلاسمیدی، پیام‌RNA (mRNA) و کمپلکس‌های RNP ارائه شوند. در HSPC، رویکردهای مبتنی بر mRNA و RNP به طور کلی تحمل بهتری نسبت به DNA پلاسمیدی دارند و بیان موقت با کاهش سمیت سلولی را امکان‌پذیر می‌کنند. در این فصل، پروتکل‌های بهینه‌شده برای الکتروپوریشن انتقال کمپلکس‌های RNP CRISPR/Cas9 و mRNA کدگذاری‌شده ویرایشگر پایه به HSPC با استفاده از سیستم Amaxa™ 4D-Nucleofector™ توصیف شده است. مراحل دقیقی برای آماده‌سازی سلول، طراحی RNA راهنما، مونتاژ RNP‌های Cas9، ترنسکریپت درون‌تنی و پالایش mRNA ویرایشگر پایه، پارامترهای الکتروپوریشن و ارزیابی کارایی ویرایش ارائه شده است. تأکید بر حداکثر کردن عملکرد ویرایش در حالی که حفظ پایداری و عملکرد سلول‌های بنیادی انجام شده است.

روش پژوهش

پروتکل‌های بهینه‌شده برای الکتروپوریشن با استفاده از سیستم Amaxa™ 4D-Nucleofector™ برای انتقال RNP‌های CRISPR/Cas9 و mRNA ویرایشگر پایه به HSPC توصیف شده است.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های روش به طور خاص در متن گزارش نشده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های بنیادی و پیش‌ساز خونی (HSPC) و سلول‌های خونی CD34⁺
مداخله/مواجهه
الکتروپوریشن برای انتقال RNP‌های CRISPR/Cas9 و mRNA ویرایشگر پایه
مقایسه
روش‌های انتقال معمول (ذکر نشده)
حجم نمونه
ذکر نشده

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Base editorCRISPR/Cas9DeliveryEditing efficiencyElectroporationGenome editingHSPCsHUDEP-2In vitro transcriptionNucleofection
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…