PubMed چکیده/رکورد

Methods for Identifying Type III Secretion System Effectors in Chlamydia trachomatis.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

To subvert host defenses and establish a replicative niche, obligate intracellular pathogens remodel the host cell using a discrete repertoire of effector proteins. For Chlamydia trachomatis, defining the repertoire of conventional type III secretion system effectors (cT3SS) has been exceedingly difficult as many of these proteins are present at low levels in the host cell and do not accumulate within a specific host compartment, necessitating signal amplification for accurate detection. Drawing on approaches widely used for assessing secretion of candidate T3SS and T4SS substrates, several enzymatic reporter tags have been adapted to evaluate secretion of putative C. trachomatis cT3SS substrates. Here we describe BlaM, CyaA, and GSK assays, which are three complementary assays that provide robust and reliable readouts of effector delivery into the host cell. This protocol describes each assay in detail, including the steps required to generate C. trachomatis transformants, confirm effector-reporter expression, and execute and analyze data for each assay.

نتیجه فارسی

این مقاله روش‌های آزمایشی برای شناسایی پروتئین‌های اثرگذار سیستم ترشح نوع III در کلامیدیا تراچوماتیس را توصیف می‌کند. سه آزمون مکمل، BlaM، CyaA و GSK، برای ارزیابی تحویل اثرگذار به سلول میزبان استفاده می‌شوند. این پروتکل شامل مراحل تولید باکتری‌های ترانسفورمونت، تأیید بیان و تحلیل داده‌هاست.

  • کلامیدیا تراچوماتیس از پروتئین‌های اثرگذار برای سرکوب دفاع‌های میزبان استفاده می‌کند.
  • شناسایی اثرگذاران cT3SS به دلیل سطوح پایین پروتئین‌ها دشوار است.
  • سه آزمون مکمل برای ارزیابی تحویل اثرگذار به سلول میزبان توصیف شده‌اند.
  • این پروتکل شامل مراحل تولید باکتری‌های ترانسفورمونت و تحلیل داده‌هاست.

ترجمه فارسی چکیده

برای سرکوب دفاع‌های میزبان و ایجاد ناحیه تکثیر، عوامل بیماری‌زا اجباری داخل‌سلولی با استفاده از مجموعه‌ای از پروتئین‌های اثرگذار، سلول میزبان را بازطراحی می‌کنند. برای کلامیدیا تراچوماتیس، تعیین مجموعه اثرگذاران سیستم ترشح نوع III کلاسیک (cT3SS) بسیار دشوار بوده است، زیرا بسیاری از این پروتئین‌ها در سطح پایینی در سلول میزبان وجود دارند و در یک کیسه میزبان خاص تجمع نمی‌کنند و نیاز به تقویت سیگنال برای تشخیص دقیق دارند. با استفاده از رویکردهایی که برای ارزیابی ترشح زیرساخت‌های احتمالی T3SS و T4SS استفاده می‌شود، چندین برچسب گزارش‌گر آنزیمی برای ارزیابی زیرساخت‌های احتمالی cT3SS کلامیدیا تراچوماتیس تطبیق داده شده‌اند. در اینجا ما آزمون‌های BlaM، CyaA و GSK را که سه آزمون مکمل هستند که خروجی‌های قوی و قابل اعتمادی از تحویل اثرگذار به سلول میزبان ارائه می‌دهند، توصیف می‌کنیم. این پروتکل هر آزمون را به تفصیل توصیف می‌کند، شامل مراحل مورد نیاز برای تولید ترانسفورمونت‌های کلامیدیا تراچوماتیس، تأیید بیان اثرگذار-گزارش‌گر و اجرا و تحلیل داده‌های هر آزمون.

روش پژوهش

این مقاله رویکردهای آنزیمی را برای ارزیابی ترشح اثرگذاران احتمالی cT3SS کلامیدیا تراچوماتیس توصیف می‌کند. سه آزمون مکمل، BlaM، CyaA و GSK، برای ارزیابی تحویل اثرگذار به سلول میزبان استفاده می‌شوند.

محدودیت‌ها

متن ارائه شده محدودیت‌های خاصی را گزارش نمی‌کند.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
کلامیدیا تراچوماتیس
مداخله/مواجهه
برچسب‌های گزارش‌گر آنزیمی (BlaM، CyaA و GSK)
مقایسه
هیچ مقایسه‌ای گزارش نشده است
حجم نمونه
گزارش نشده است

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

BlaM assayChlamydia trachomatisCyaA assayGSK assayInclusion membrane proteins (Incs)T3SS effector
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Conditional Knockout Mutant Approach to Study Essential Genes in Chlamydia in Cell Culture and In Vivo.

Identification and characterization of essential Chlamydia-specific factors are vital for the generation of effective therapeutics and vaccines. Despite delays in the development of genetic tools for Chlamydia, significant advancements in Chlamydia genetic manipulation have been made over the last decade and a half, now allowing for the targeted interruption or deletion of chromosomal genes. However, because of the obligate intracellul…

PubMed2027

Analysis of Cell Populations from Arbovirus-Infected Tissues by Flow Cytometry.

Arboviruses still represent a major challenge to public health in many parts of the world. Despite shared epidemiological characteristics, each arboviral disorder displays distinct cellular tropism and activation patterns, progressing to immunopathological outcomes that remain not fully elucidated. A deeper understanding of these processes requires methodologies capable of characterizing the often-complex cellular responses. In this co…

PubMed2027

Analysis of Chlamydia trachomatis Gene Function via Controlled Up- or Downregulation.

Due to genome streamlining, many genes in the ~1 Mb genome of Chlamydia trachomatis are essential and cannot be deleted. Ectopic overexpression and CRISPRi-based knockdown are complementary genetic approaches to study the function of genes in C. trachomatis, including essential genes. When used in combination with inducible promoters, these tools allow researchers to determine how precise regulation of gene expression contributes to pr…

PubMed2027

Analysis of Spatial Gene Expression in Chlamydia Using Fluorescent In Situ Hybridization.

The obligate intracellular bacterium Chlamydia employs a unique, asynchronous biphasic developmental cycle characterized by distinct morphological forms: the replicative reticulate body (RB), the infectious elementary body (EB), and an intermediate body (IB). The simultaneous presence of these phenotypically distinct cell types throughout infection complicates the study of gene expression regulation during development. Conventional pop…