PubMed چکیده/رکورد

Analysis of Cell Populations from Arbovirus-Infected Tissues by Flow Cytometry.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Arboviruses still represent a major challenge to public health in many parts of the world. Despite shared epidemiological characteristics, each arboviral disorder displays distinct cellular tropism and activation patterns, progressing to immunopathological outcomes that remain not fully elucidated. A deeper understanding of these processes requires methodologies capable of characterizing the often-complex cellular responses. In this context, flow cytometry emerges as a valuable tool, enabling the characterization of heterogeneous cell populations, the assessment of activation and proliferation markers, the quantification of inflammatory mediators, and the detection of cell death pathways. By integrating these parameters, flow cytometry can enhance our understanding of arbovirus pathogenesis, clarify their cellular tropism, and understand immune responses to infection. This methodological article outlines the main steps for applying the technique to different target tissues infected by chikungunya, dengue, yellow fever, and Zika viruses, emphasizing the most effective strategies.

نتیجه فارسی

این مقاله روش‌های سیتومتری جریان را برای تحلیل پاسخ‌های سلولی در بافت‌های آلوده به ویروس‌های آروویروس (مانند چیکونگونیا و دنگه) توصیف می‌کند. هدف روش، درک بهتر تروپیسیم سلولی و پاسخ ایمنی است. مقاله مراحل اعمال تکنیک را برای بافت‌های مختلف شرح می‌دهد.

  • سیتومتری جریان ابزاری برای توصیف جمعیت‌های سلولی و پاسخ‌های ایمنی است.
  • روش برای بافت‌های آلوده به ویروس‌های چیکونگونیا، دنگه، زردکو و زیکا استفاده می‌شود.
  • این تکنیک مارکرهای فعال‌سازی، التهاب و مرگ سلولی را ارزیابی می‌کند.
  • هدف روش روشن‌سازی مسیرهای پاتوژنز آروویروس‌هاست.

ترجمه فارسی چکیده

آروویروس‌ها همچنان چالش اصلی سلامت عمومی در بسیاری از نقاط جهان هستند. هرچند ویژگی‌های اپیدمیولوژیک مشترکی دارند، اما هر نارسایی آروویروس الگوی متفاوتی از تروپیسیم سلولی و فعال‌سازی را نشان می‌دهد و به نتایج ایمونوپاتولوژیک می‌رسد که هنوز به‌طور کامل روشن نشده است. درک عمیق‌تر این فرآیندها نیازمند روش‌هایی است که بتوانند پاسخ‌های پیچیده سلولی را توصیف کنند. در این زمینه، سیتومتری جریان ابزاری ارزشمند است که امکان توصیف جمعیت‌های سلولی غیرهمگن، ارزیابی مارکرهای فعال‌سازی و تکثیر، کمی‌سازی میانجی‌های التهابی و تشخیص مسیرهای مرگ سلولی را فراهم می‌کند. با ادغام این پارامترها، سیتومتری جریان می‌تواند درک ما از پاتوژنز آروویروس‌ها، تروپیسیم سلولی آن‌ها و پاسخ ایمنی به عفونت را ارتقا دهد. این مقاله روشی، مراحل اصلی اعمال این تکنیک را برای بافت‌های هدف مختلف آلوده به ویروس‌های چیکونگونیا، دنگه، زردکو و زیکا outlines می‌کند و روی استراتژی‌های مؤثر تأکید می‌نماید.

روش پژوهش

این مقاله روشی است که مراحل اعمال سیتومتری جریان را برای بافت‌های هدف آلوده به ویروس‌های چیکونگونیا، دنگه، زردکو و زیکا outlines می‌کند.

محدودیت‌ها

محدودیت‌ها در متن گزارش نشده‌اند.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
بافت‌های آلوده به ویروس‌های آروویروس (چیکونگونیا، دنگه، زردکو، زیکا).
مداخله/مواجهه
سیتومتری جریان.
مقایسه
مورد مقایسه قرار نگرفته است.
حجم نمونه
گزارش نشده است.

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

ArbovirusChikungunyaDengueFlow cytometryYellow feverZika
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…