PubMed چکیده/رکورد

Analysis of Spatial Gene Expression in Chlamydia Using Fluorescent In Situ Hybridization.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

The obligate intracellular bacterium Chlamydia employs a unique, asynchronous biphasic developmental cycle characterized by distinct morphological forms: the replicative reticulate body (RB), the infectious elementary body (EB), and an intermediate body (IB). The simultaneous presence of these phenotypically distinct cell types throughout infection complicates the study of gene expression regulation during development. Conventional population-level assays are inadequate for dissecting the regulatory mechanisms within this mixed population. This chapter describes a robust method utilizing hybridization chain reaction (HCR) RNA fluorescence in situ hybridization (FISH) in conjunction with dual-promoter reporter Chlamydia strains to determine cell-form-specific transcript expression. We leverage dual-reporter strains to provide visual identification of RBs and EBs. Probes targeting genes of interest are designed to interact with spectrally distinct fluorescent HCR amplifiers. This versatile, multiplexing system allows for precise spatial and temporal localization of specific mRNAs within identified Chlamydial cell forms, offering a powerful tool to overcome current limitations in Chlamydia research and elucidate the regulatory underpinnings of its complex life cycle.

نتیجه فارسی

این فصل روشی برای تعیین بیان ژن در اشکال متمایز سلولی کلامیدیا (RB و EB) با استفاده از FISH و استرهای دوگانه گزارشگر ارائه می‌دهد. این روش به مطالعه تنظیم بیان ژن در چرخه تکاملی پیچیده کلامیدیا کمک می‌کند.

  • کلامیدیا چرخه تکاملی دو فازی با اشکال متمایز RB و EB دارد.
  • روش FISH همراه با استرهای دوگانه گزارشگر برای شناسایی بصری RB و EB استفاده می‌شود.
  • سؤال‌های هدف‌گذاری شده با آ amplifiers فلوئورسنت HCR متمایز طیفی تعامل دارند.
  • این سیستم مکان‌یابی دقیق زمانی و مکانی mRNAهای خاص را امکان‌پذیر می‌سازد.

ترجمه فارسی چکیده

کلامیدیا، باکتری انگل سلولی اجباری، یک چرخه تکاملی دو فازی غیرهمگام و منحصر به فرد با اشکال مورفولوژیک متمایز (بدن رتیکولات RB، بدن اولیه EB و بدن واسط IB) دارد. همزمانی این انواع سلولی در طول عفونت، مطالعه تنظیم بیان ژن را پیچیده می‌کند. آزمون‌های سطح جمعیت سنتی برای بررسی مکانیسم‌های تنظیم در این جمعیت آمیخته کافی نیستند. این فصل روشی مقاوم را توصیف می‌کند که از هیبریداسیون زنجیره‌ای (HCR) و فلوئورسنت در محل (FISH) همراه با استرهای گزارشگر دو پروموتر برای تعیین بیان ترنسکریپت‌های خاص نوع سلول استفاده می‌کند. ما از استرهای دوگانه برای شناسایی بصری RBها و EBها استفاده می‌کنیم. سؤال‌های هدف‌گذاری شده برای ژن‌های مورد نظر طوری طراحی می‌شوند که با آ amplifiers فلوئورسنت HCR متمایز طیفی تعامل داشته باشند. این سیستم چندگانه و منعطف، مکان‌یابی دقیق زمانی و مکانی mRNAهای خاص در اشکال سلولی شناسایی شده کلامیدیا را امکان‌پذیر می‌سازد.

روش پژوهش

این فصل روشی را توصیف می‌کند که از هیبریداسیون زنجیره‌ای (HCR) و فلوئورسنت در محل (FISH) همراه با استرهای دوگانه گزارشگر برای کلامیدیا استفاده می‌کند.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های روش در متن گزارش نشده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
کلامیدیا (اشکال RB و EB)
مداخله/مواجهه
استفاده از FISH و استرهای دوگانه گزارشگر
مقایسه
نامشخص
حجم نمونه
نامشخص

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

ChlamydiaDevelopmental cell formsFISHGene expressionSingle cell analysisTranscriptionmRNA quantification
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…