PubMed چکیده/رکورد

Labeling and Detection of Peptidoglycan in Chlamydia and Chlamydia-Related Organisms Utilizing D-Alanine Analogs.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

The incorporation and visualization of modified D-amino acids into the peptidoglycan (PG) of actively replicating microbes have made a tremendous impact on the field of bacterial physiology. Here, we describe the optimization of this technique for labeling PG in obligate, intracellular Chlamydia species as well as Chlamydia-like organisms. Fluorescent D-amino acids (FDAAs) are D-alanine analogs that readily incorporate into the stem peptides of living bacteria and can be visualized rapidly with a fluorescence microscope without the need for laborious postfixation procedures. By comparison, D-amino acid analogs (DAAAs) and D-amino acid dipeptides (DAADs) similarly incorporate into newly synthesized peptidoglycan but require postfixation steps to effectively visualize PG. These probes were foundational in demonstrating the presence of PG in Protochlamydia and Chlamydia species, and PG labeling is a convenient tool that can augment other fluorescence imaging approaches. Here, we provide a protocol for the incorporation of D-alanine analogs into the PG of intracellular bacteria and the subsequent steps enabling these amino acids to be visualized via fluorescence microscopy. We also describe the use of an analysis tool that enables the mapping of PG-labeled objects in three-dimensional space and a protocol for confirming that modified amino acids are incorporating into bacterial PG.

نتیجه فارسی

این مقاله بهینه‌سازی تکنیک برچسب‌گذاری پلی‌ساکارید دیواره سلولی (PG) در کلامیدیا و ارگانیسم‌های شبیه آن را با استفاده از آنالوگ‌های D-آلانین توصیف می‌کند. این روش از اسیدهای آمینه D-تغییریافته فلورسنت (FDAAs) استفاده می‌کند که نیازی به مراحل پیچیده پس از ثابت‌سازی ندارند. مقایسه‌ای با آنالوگ‌های دیگر نیز ارائه شده است.

  • برچسب‌گذاری PG با FDAAs نیازی به مراحل پس از ثابت‌سازی ندارد.
  • FDAAs به راحتی در PG باکتری‌های زنده ادغام می‌شوند.
  • این روش برای کلامیدیا و ارگانیسم‌های شبیه کلامیدیا بهینه شده است.
  • ابزار تحلیلی برای نقشه‌برداری سه‌بعدی PG برچسب‌خورده ارائه شده است.

ترجمه فارسی چکیده

ادغام و تصویربرداری از اسیدهای آمینه D-تغییریافته در پلی‌ساکارید دیواره سلولی (PG) میکروارگانیسم‌های در حال تکثیر فعال، تأثیر بزرگی در زمینه فیزیولوژی باکتری داشته است. در اینجا، بهینه‌سازی این تکنیک برای برچسب‌گذاری PG در گونه‌های کلامیدیا اجباری و داخلی و ارگانیسم‌های شبیه کلامیدیا توصیف شده است. اسیدهای آمینه D-تغییریافته فلورسنت (FDAAs) که آنالوگ‌های D-آلانین هستند، به راحتی در پپتیدهای استوانه‌ای باکتری‌های زنده ادغام می‌شوند و می‌توانند به سرعت با میکروسکوپ فلورسنت بدون نیاز به مراحل پیچیده پس از ثابت‌سازی، تصویربرداری شوند. مقایسه با آنالوگ‌های اسید آمینه D (DAAAs) و دی‌پپتیدهای اسید آمینه D (DAADs) نشان می‌دهد که هر دو نیز در PG تازه سنتز شده ادغام می‌شوند اما برای تصویربرداری مؤثر PG نیاز به مراحل پس از ثابت‌سازی دارند. این سنجش‌ها در اثبات وجود PG در گونه‌های پروتوکلامیدیا و کلامیدیا بنیادین بودند و برچسب‌گذاری PG ابزاری راحت است که می‌تواند رویکرد‌های دیگر تصویربرداری فلورسنت را تقویت کند. در اینجا، پروتکل ادغام آنالوگ‌های D-آلانین در PG باکتری‌های داخلی و مراحل بعدی برای امکان‌پذیری تصویربرداری این اسیدهای آمینه از طریق میکروسکوپ فلورسنت ارائه شده است. همچنین استفاده از یک ابزار تحلیلی برای نقشه‌برداری اشیاء برچسب‌خورده PG در فضا سه‌بعدی و پروتکلی برای تأیید اینکه اسیدهای آمینه تغییر یافته در PG باکتری ادغام می‌شوند، توصیف شده است.

روش پژوهش

تکنیک برچسب‌گذاری PG با استفاده از اسیدهای آمینه D-تغییریافته فلورسنت (FDAAs) بهینه شده است. همچنین پروتکل‌هایی برای نقشه‌برداری سه‌بعدی و تأیید ادغام آنالوگ‌ها در PG ارائه شده است.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های روش در متن گزارش نشده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
کلامیدیا و ارگانیسم‌های شبیه کلامیدیا (از جمله گونه‌های اجباری و داخلی)
مداخله/مواجهه
ادغام آنالوگ‌های D-آلانین (به ویژه FDAAs) در پلی‌ساکارید دیواره سلولی
مقایسه
آنالوگ‌های اسید آمینه D (DAAAs) و دی‌پپتیدهای اسید آمینه D (DAADs)
حجم نمونه
گزارش نشده است.

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Click-chemistryDAADEDAEDA-DAFDAAFluorescence microscopyPeptidoglycan
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…