PubMed چکیده/رکورد

Quantification of Human T Cell Responses to Chlamydia trachomatis: Intracellular Cytokine Staining (ICS) and Activation-Induced Marker (AIM) Assays.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

High-resolution characterization of antigen-specific T cell responses is essential for understanding cellular immunity to Chlamydia trachomatis infection in humans. This chapter describes two complementary flow cytometry-based approaches for measuring human antigen-specific T cell responses: intracellular cytokine staining (ICS) and activation-induced marker (AIM) staining. Both assays enable single-cell-level analysis following antigen stimulation but differ in their readouts. ICS quantifies functional cytokine production in response to short- or long-term stimulation, whereas the AIM assay identifies antigen-specific T cells based on transient surface expression of activation markers without fixation or permeabilization, preserving cells for downstream applications. Detailed protocols are provided for peripheral blood mononuclear cell (PBMC) thawing and preparation, short-term or long-term antigen stimulation, and flow cytometry staining, as well as practical considerations for assay selection, experimental controls, optimization, and data acquisition.

نتیجه فارسی

این فصل دو روش سیتوفلوومتری برای اندازه‌گیری پاسخ‌های لنفوسیتی T خاص آنتی‌ژنی انسانی به کلامیدیا تراکوماتیس را توصیف می‌کند: رنگ‌آمیزی سیتوکین داخل سلولی (ICS) و رنگ‌آمیزی نشانگرهای تحریک‌یافته (AIM). هر دو روش تحلیل در سطح سلولی را پس از تحریک آنتی‌ژنی امکان‌پذیر می‌کنند. ICS تولید عملکردی سیتوکین را در پاسخ به تحریک کوتاه‌مدت یا بلندمدت کمیت‌سازی می‌کند، در حالی که آزمون AIM لنفوسیت‌های خاص آنتی‌ژنی را بر اساس بیان موقت نشانگرهای تحریک بر سطح سلولی شناسایی می‌کند.

  • ICS تولید عملکردی سیتوکین را در پاسخ به تحریک کوتاه‌مدت یا بلندمدت کمیت‌سازی می‌کند.
  • آزمون AIM لنفوسیت‌های خاص آنتی‌ژنی را بر اساس بیان موقت نشانگرهای تحریک بر سطح سلولی شناسایی می‌کند.
  • آزمون AIM نیازی به ثابت‌سازی یا نفوذپذیری سلولی ندارد و سلول‌ها را برای کاربردهای بعدی حفظ می‌کند.
  • پروتکل‌های دقیقی برای آماده‌سازی PBMC و تحریک آنتی‌ژنی ارائه شده است.

ترجمه فارسی چکیده

شناخت با دقت بالا از پاسخ‌های لنفوسیتی خاص آنتی‌ژنی برای درک ایمنی سلولی در برابر عفونت کلامیدیا تراکوماتیس در انسان ضروری است. این فصل دو رویکرد مکمل مبتنی بر سیتوفلوومتری برای اندازه‌گیری پاسخ‌های لنفوسیتی T خاص آنتی‌ژنی انسانی را توصیف می‌کند: رنگ‌آمیزی سیتوکین داخل سلولی (ICS) و رنگ‌آمیزی نشانگرهای تحریک‌یافته (AIM). هر دو روش تحلیل در سطح سلولی را پس از تحریک آنتی‌ژنی امکان‌پذیر می‌کنند، اما در خروجی‌های خود متفاوت هستند. ICS تولید عملکردی سیتوکین را در پاسخ به تحریک کوتاه‌مدت یا بلندمدت کمیت‌سازی می‌کند، در حالی که آزمون AIM لنفوسیت‌های خاص آنتی‌ژنی را بر اساس بیان موقت نشانگرهای تحریک بر سطح سلولی شناسایی می‌کند بدون نیاز به ثابت‌سازی یا نفوذپذیری، که سلول‌ها را برای کاربردهای بعدی حفظ می‌کند. پروتکل‌های دقیقی برای ذوب و آماده‌سازی سلول‌های خون محیطی (PBMC)، تحریک آنتی‌ژنی کوتاه‌مدت یا بلندمدت و رنگ‌آمیزی سیتوفلوومتری، به همراه نکات عملی برای انتخاب آزمون، کنترل‌های آزمایشگاهی، بهینه‌سازی و دریافت داده‌ها ارائه شده است.

روش پژوهش

این فصل رویکردهای مبتنی بر سیتوفلوومتری را برای اندازه‌گیری پاسخ‌های لنفوسیتی T خاص آنتی‌ژنی انسانی توصیف می‌کند.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های گزارش شده در متن شامل نکات عملی برای انتخاب آزمون، کنترل‌های آزمایشگاهی، بهینه‌سازی و دریافت داده‌ها است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
لنفوسیت‌های T انسانی
مداخله/مواجهه
تحریک آنتی‌ژنی کلامیدیا تراکوماتیس
مقایسه
نامشخص
حجم نمونه
نامشخص

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Activation-induced marker (AIM) assayAntigen specificityChlamydiaChlamydia trachomatisChlamydial protease-like activity factor (CPAF)Clinical samplesFlow cytometryHuman immunologyIntracellular cytokine staining (ICS)Major outer membrane protein (MOMP)T cell assays
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…