PubMed چکیده/رکورد

Chlamydia trachomatis Infection in a Microphysiologic Cell Culture Model.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Chlamydia trachomatis is an obligate intracellular bacterium that infects the columnar epithelium of the human endocervix. While conventional two-dimensional cell cultures and animal models have been instrumental in advancing our understanding of C. trachomatis biology, they are limited in capturing the multicellularity, architecture, and physiological microenvironment of the human cervix. This chapter describes the use of a three-dimensional (3D) microphysiologic model to study Chlamydia trachomatis infection. The model is inexpensively made without specialized equipment and is designed to recreate the epithelial-stromal interface. We outline procedures for coculturing cervical epithelial cells and fibroblasts, infecting epithelial cells with fluorescently labeled C. trachomatis, monitoring infection progression via fluorescent microscopy, and quantifying infectious progeny. The complete developmental cycle of C. trachomatis within this model provides a robust and accessible platform to investigate C. trachomatis-specific host-pathogen interactions, immune responses, and the influence of diverse physiological and environmental stimuli within a relevant cervical context.

نتیجه فارسی

این فصل یک مدل میکروفیزیولوژیک سه بعدی ارزان و بدون تجهیزات تخصصی را برای مطالعه عفونت کلامیدیا تراکوماتیس توصیف می‌کند که بافت‌های مخاطی و بافتی دهانه رحم را بازسازی می‌کند. این مدل شامل هم‌کشت سلول‌های مخاطی و فیبروبلاست‌ها و آلوده کردن سلول‌های مخاطی با باکتری برچسب‌دار شده است. این پلتفرم امکان بررسی چرخه کامل رشد باکتری و تعاملات میزبان-عامل را در یک محیط مرتبط با رحم فراهم می‌کند.

  • توصیف یک مدل میکروفیزیولوژیک سه بعدی ارزان برای مطالعه C. trachomatis
  • بازسازی واسط بافت‌های مخاطی-بافتی دهانه رحم
  • روال‌های هم‌کشت سلول‌های مخاطی و فیبروبلاست‌ها
  • آلوده کردن سلول‌های مخاطی با C. trachomatis برچسب‌دار شده
  • بررسی چرخه کامل رشد و تعاملات میزبان-عامل

ترجمه فارسی چکیده

کلامیدیا تراکوماتیس یک باکتری انگل سلولی اجباری است که سلول‌های مخطط مخاطی دهانه رحم انسان را آلوده می‌کند. در حالی که کشت‌های سلولی دو بعدی سنتی و مدل‌های حیوانی در درک زیست‌شناسی C. trachomatis نقش داشته‌اند، محدودیت‌هایی در ثبت چندسلولی، معماری و محیط فیزیولوژیک رحم انسان دارند. این فصل استفاده از یک مدل میکروفیزیولوژیک سه بعدی (3D) برای مطالعه عفونت کلامیدیا تراکوماتیس را توصیف می‌کند. این مدل به‌صورت ارزان و بدون تجهیزات تخصصی ساخته می‌شود و برای بازسازی واسط بافت‌های مخاطی-بافتی طراحی شده است. ما روال‌های هم‌کشت سلول‌های مخاطی دهانه رحم و فیبروبلاست‌ها، آلوده کردن سلول‌های مخاطی با C. trachomatis برچسب‌دار شده با فلورسنت، نظارت بر پیشرفت عفونت از طریق میکروسکوپ فلورسنت و اندازه‌گیری فرزندان عفونی را تشریح می‌کنیم. چرخه کامل رشد C. trachomatis در این مدل، یک پلتفرم مقاوم و دسترسی‌پذیر برای بررسی تعاملات میزبان-عامل خاص C. trachomatis، پاسخ‌های ایمنی و تأثیر محرک‌های فیزیولوژیک و محیطی متنوع در یک زمینه مرتبط با دهانه رحم فراهم می‌کند.

روش پژوهش

این فصل روال‌های هم‌کشت سلول‌های مخاطی دهانه رحم و فیبروبلاست‌ها، آلوده کردن سلول‌های مخاطی با C. trachomatis برچسب‌دار شده و نظارت بر عفونت از طریق میکروسکوپ فلورسنت را تشریح می‌کند.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های مدل به دلیل استفاده از یک مدل میکروفیزیولوژیک ساده برای بازسازی محیط پیچیده رحم انسان ذکر نشده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های مخاطی دهانه رحم انسان و فیبروبلاست‌ها
مداخله/مواجهه
C. trachomatis برچسب‌دار شده با فلورسنت
مقایسه
ذکر نشده
حجم نمونه
ذکر نشده

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

BiomimeticCervical microenvironmentChlamydia trachomatisEpithelial cellFibroblastsOrgan-on-a-chipThree-dimensional model
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…