PubMed چکیده/رکورد

Comprehensive Isolation Strategy for Intestinal Epithelial and Fibroblast Cells from Healthy and Tumor Human Tissues.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Organoids and fibroblasts derived from patient tissue serve as physiologically meaningful in vitro models to investigate tissue biology, diseases, and treatment responses. In this study, we present a robust protocol for the simultaneous isolation and long-term culture of patient-derived organoids (PDOs) and fibroblasts from both healthy and colorectal cancer samples. The workflow uses enzymatic dissociation followed by efficient separation into epithelial and stromal cell fractions. Organoids are embedded in Matrigel or Matrigel-Collagen I mixtures to support three-dimensional growth, whereas fibroblasts are maintained on conventional two-dimensional culture dishes. This dual-culture approach facilitates a broad range of downstream applications.

نتیجه فارسی

این مقاله یک پروتکل قوی برای جداسازی همزمان آرگانوئیدها و فیبروبلاست‌ها از بافت‌های سالم و سرطان روده بزرگ ارائه می‌دهد. این روش از تجزیه آنزیمی و جداسازی سلول‌ها به دو کسر اپیتلیال و استرومال استفاده می‌کند. آرگانوئیدها در ماتریژل و فیبروبلاست‌ها در ظروف کشت دو‌بعدی رشد می‌کنند.

  • جداسازی همزمان آرگانوئیدها و فیبروبلاست‌ها از بافت‌های سالم و سرطان روده بزرگ.
  • استفاده از تجزیه آنزیمی و جداسازی به دو کسر سلولی.
  • رشد آرگانوئیدها در ماتریژل و فیبروبلاست‌ها در ظروف کشت دو‌بعدی.
  • این رویکرد برای کاربردهای پایین‌دست مناسب است.

ترجمه فارسی چکیده

آرگانوئیدها و فیبروبلاست‌های حاصل از بافت بیمار به عنوان مدل‌های معنادار فیزیولوژیک در vitro برای بررسی زیست‌شناسی بافت، بیماری‌ها و پاسخ‌های درمانی استفاده می‌شوند. در این مطالعه، ما یک پروتکل قوی برای جداسازی همزمان و کشت بلندمدت آرگانوئیدهای و فیبروبلاست‌های حاصل از بافت بیماران (از جمله نمونه‌های سالم و سرطان روده بزرگ) ارائه می‌دهیم. این جریان کار از تجزیه آنزیمی و جداسازی کارآمد به دو کسر سلولی اپیتلیال و استرومال استفاده می‌کند. آرگانوئیدها در مخلوط‌های ماتریژل یا ماتریژل-کلاژن ۱ جاسازی می‌شوند تا رشد سه‌بعدی را پشتیبانی کنند، در حالی که فیبروبلاست‌ها در ظروف کشت دو‌بعدی معمولی نگهداری می‌شوند. این رویکرد دوگانه کشت، طیف وسیعی از کاربردهای پایین‌دست را تسهیل می‌کند.

روش پژوهش

این مطالعه یک پروتکل قوی برای جداسازی همزمان آرگانوئیدها و فیبروبلاست‌ها از بافت‌های سالم و سرطان روده بزرگ ارائه می‌دهد. این روش از تجزیه آنزیمی و جداسازی سلول‌ها به دو کسر اپیتلیال و استرومال استفاده می‌کند.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های روش در متن گزارش نشده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
بافت‌های سالم و سرطان روده بزرگ انسانی
مداخله/مواجهه
پروتکل جامع جداسازی همزمان آرگانوئیدها و فیبروبلاست‌ها
مقایسه
در متن گزارش نشده است.
حجم نمونه
در متن گزارش نشده است.

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Extracellular matrixFibroblastsMatrigel-Collagen IPatient-derived organoidsTumor microenvironment
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…