PubMed چکیده/رکورد

Deep Insights Without Clearing: An Optimized Protocol for Patient-Derived Whole-Organoid Immunofluorescence Imaging.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Here, we present an optimized whole-organoid immunofluorescence staining protocol that preserves morphology, achieves uniform antibody penetration, and enables deep-tissue imaging without the need for tissue clearing. Organoids are three-dimensional, self-organizing structures that replicate many of the cellular and architectural features of their tissue of origin, making them powerful preclinical models for studying development, disease, and therapeutic responses. Most organoid research is performed on formalin-fixed, paraffin-embedded (FFPE) samples, in which organoids are sectioned across the Z-planes. While this method facilitates conventional histological analysis, it limits spatially resolved visualization of protein expression and tissue organization. The inherent density and abundant extracellular matrix of organoids present substantial barriers to reagent penetration and imaging depth, further constraining the ability to capture their three-dimensional architecture in full. Our new workflow includes steps for fixation, permeabilization, and antibody incubation and has been validated on intestinal organoids using markers for different membrane-associated proteins. By providing high-quality staining through the full organoid depth without clearing, this protocol streamlines sample preparation, reduces processing artifacts, and allows more rapid, accurate 3D mapping of cell types and structures in organoid-based research.

نتیجه فارسی

این مقاله یک پروتکل جدید برای رنگ‌آمیزی کل‌ساختارهای ارگانیوید با ایمنوفلوئورسانس را معرفی می‌کند که نیازی به شفاف‌سازی بافت ندارد. این روش با حفظ مورفولوژی و نفوذ یکنواخت آنتی‌بادی، امکان تصویربرداری عمیق را فراهم می‌کند. این پروتکل بر روی ارگانیویدهای روده تأیید شده و برای تحقیقات پیش‌بالینی کاربرد دارد.

  • پروتکل بهینه‌شده برای رنگ‌آمیزی کل‌ساختارهای ارگانیوید با ایمنوفلوئورسانس بدون نیاز به شفاف‌سازی بافت.
  • حفظ مورفولوژی و دستیابی به نفوذ یکنواخت آنتی‌بادی در بافت‌های سه‌بعدی.
  • امکان تصویربرداری عمیق با کیفیت بالا از کل ارگانیوید.
  • تأیید پروتکل بر روی ارگانیویدهای روده با نشانگرهای پروتئین‌های مرتبط با غشا.
  • کاهش خطاهای فرآیند و ساده‌سازی آماده‌سازی نمونه.

ترجمه فارسی چکیده

در اینجا، ما یک پروتکل بهینه‌شده برای رنگ‌آمیزی کل‌ساختارهای ارگانیوید با ایمنوفلوئورسانس را ارائه می‌دهیم که با حفظ مورفولوژی، دستیابی به نفوذ یکنواخت آنتی‌بادی و امکان تصویربرداری با عمق بافت بدون نیاز به شفاف‌سازی بافت، همراه است. ارگانیویدها ساختارهای سه‌بعدی و خودسازمان‌دهنده‌ای هستند که بسیاری از ویژگی‌های سلولی و معماری بافت اصلی خود را بازتولید می‌کنند، که آن‌ها را به مدل‌های پیش‌بالینی قدرتمندی برای مطالعه توسعه، بیماری و پاسخ‌های درمانی تبدیل می‌کند. اکثر تحقیقات ارگانیوید بر روی نمونه‌های ثابت شده با فرمالین و درون‌گذاری شده در پارافین (FFPE) انجام می‌شود، که در آن ارگانیویدها در راستای صفحات Z برش می‌خورند. در حالی که این روش تحلیل هیستولوژیک متداول را تسهیل می‌کند، نمایش بصری مکانی با تفکیک بالا از بیان پروتئین و سازماندهی بافت را محدود می‌کند. چگالی و ماتریکس خارج سلولی فراوان ارگانیویدها موانع قابل توجهی برای نفوذ عوامل شیمیایی و عمق تصویربرداری ایجاد می‌کنند که قابلیت ثبت کامل معماری سه‌بعدی آن‌ها را محدود می‌کند. گردش کار جدید ما شامل مراحل ثابت‌سازی، نفوذپذیری و استراحت آنتی‌بادی است و با استفاده از نشانگرهای پروتئین‌های مختلف مرتبط با غشا در ارگانیویدهای روده، تأیید شده است. با ارائه رنگ‌آمیزی با کیفیت بالا از طریق کل عمق ارگانیوید بدون شفاف‌سازی، این پروتکل آماده‌سازی نمونه را ساده می‌کند، خطاهای فرآیند را کاهش می‌دهد و امکان نقشه‌برداری سریع‌تر و دقیق‌تر سه‌بعدی از انواع سلولی و ساختارها در تحقیقات مبتنی بر ارگانیوید را فراهم می‌کند.

روش پژوهش

پروتکل شامل مراحل ثابت‌سازی، نفوذپذیری و استراحت آنتی‌بادی است. تأیید پروتکل بر روی ارگانیویدهای روده با استفاده از نشانگرهای پروتئین‌های مختلف مرتبط با غشا انجام شده است.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های این پروتکل در متن گزارش نشده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
ارگانیویدهای روده (تأیید شده با نشانگرهای پروتئین‌های مرتبط با غشا)
مداخله/مواجهه
پروتکل بهینه‌شده رنگ‌آمیزی کل‌ساختارهای ارگانیوید با ایمنوفلوئورسانس (شامل مراحل ثابت‌سازی، نفوذپذیری و استراحت آنتی‌بادی)
مقایسه
روش‌های متداول رنگ‌آمیزی بر روی نمونه‌های FFPE که نیازمند برش در راستای صفحات Z هستند
حجم نمونه
تعداد نمونه در متن گزارش نشده است.

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

3D cell cultureAntibody penetrationConfocal microscopyDeep-tissue imagingNo tissue clearingOrganoidsWhole-mount immunostaining
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…