PubMed چکیده/رکورد

Rapid and Efficient Genetic Manipulation of Intestinal Organoids Under Transient Two-Dimensional Culture Conditions.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Genetic manipulation of cells represents one of the fundamental techniques in current biological research, essential for elucidating the regulatory mechanisms underlying various biological phenomena, modeling many diseases, and investigating their therapeutic interventions. However, in the context of organoid biology, the manipulation of target genes and the selection of resultant genetically modified clones often encounter significant technical challenges due to the typically low gene introduction efficiency. This difficulty is largely attributed to the three-dimensional culture of organoids within the basement membrane matrix, which can be substantially mitigated by employing transient two-dimensional culture conditions during the introduction of genes. This section describes a method involving the temporary use of two-dimensional culture of intestinal organoids on collagen gel, followed by gene introduction using lipofection or lentiviral vectors. This method allows rapid and efficient genetic manipulation of intestinal organoids and can be applied to organoids from other organs.

نتیجه فارسی

این روش تغییر ژنتیکی بافت‌های روده‌ای را با استفاده از شرایط موقت کشت دو بعدی روی ژل کلاژن و ورود ژن با وکتورهای لنتی‌وایرال یا لپوفکشن تسهیل می‌کند. این رویکرد کارآیی ورود ژن را افزایش داده و می‌تواند به بافت‌های سایر اندام‌ها نیز اعمال شود.

  • تغییر ژنتیکی سلول‌ها برای elucidating مکانیسم‌های زیستی ضروری است.
  • کشت سه بعدی بافت‌های روده‌ای کارآیی ورود ژن را کاهش می‌دهد.
  • استفاده از شرایط موقت کشت دو بعدی کارآیی را بهبود می‌بخشد.
  • روش شامل کشت روی ژل کلاژن و ورود ژن با وکتورهای لنتی‌وایرال است.

ترجمه فارسی چکیده

تغییر ژنتیکی سلول‌ها یکی از تکنیک‌های بنیادی در تحقیقات زیستی است که برای elucidating مکانیسم‌های تنظیمی و مدل‌سازی بیماری‌ها ضروری است. اما در بافت‌های روده‌ای، تغییر ژن‌های هدف و انتخاب کلون‌های تغییر یافته به دلیل کارآیی پایین ورود ژن معمولاً چالش‌های فنی ایجاد می‌کند. این مشکل به دلیل کشت سه بعدی در ماتریس لایه پایه است. استفاده از شرایط موقت کشت دو بعدی می‌تواند این مشکل را به‌طور قابل توجهی کاهش دهد. این بخش روشی را توصیف می‌کند که شامل استفاده موقت از کشت دو بعدی روی ژل کلاژن و سپس ورود ژن با استفاده از لپوفکشن یا وکتورهای لنتی‌وایرال است.

روش پژوهش

روش شامل استفاده موقت از کشت دو بعدی بافت‌های روده‌ای روی ژل کلاژن و سپس ورود ژن با استفاده از لپوفکشن یا وکتورهای لنتی‌وایرال است.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های روش در متن گزارش نشده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
بافت‌های روده‌ای (و سایر اندام‌ها)
مداخله/مواجهه
تغییر ژنتیکی با استفاده از لپوفکشن یا وکتورهای لنتی‌وایرال در شرایط موقت کشت دو بعدی روی ژل کلاژن
مقایسه
کشت سه بعدی در ماتریس لایه پایه
حجم نمونه
گزارش نشده است

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Genetic manipulationIntestinal epithelial cellsLentivirusLipofectionOrganoid culture
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…