PubMed چکیده/رکورد

Animal-Free Intestinal Epithelial 2D "Organoid-Sheet" Cultures Using Invasin.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

The intestinal epithelium consists of a single layer of polarized cells that serves as a crucial barrier against pathogens while mediating food digestion and nutrient absorption. The differentiated villus cells, important for the intestine's function, originate from rapidly dividing Lgr5+ stem cells located in the intestinal crypts. These stem cells can be expanded in vitro and form three-dimensional (3D) "mini-organs" known as intestinal organoids, which closely phenocopy the intestinal epithelium. The development and maintenance of these 3D organoids depend on a defined growth factor cocktail and on extracellular matrix (ECM) support to preserve apical-basal polarity - an essential feature for nutrient uptake, growth, and the barrier function. Matrigel or BME has been used as the standard ECM hydrogel scaffold for organoid culture. Recently, we identified the bacterial protein Invasin as a defined ECM substitute that can fully recapitulate Matrigel/BME function. Utilizing recombinant Invasin coated on transwells, we developed a two-dimensional (2D) intestinal monolayer culture system. The intestinal stem cells form a polarized, confluent epithelial sheet while maintaining stemness and differentiation capacity into functional epithelial cell types. Compared to traditional 3D cultures, this 2D system offers advantages such as improved imaging, easier access to apical and basal compartments, and compatibility with automation for high-throughput applications. Here, we present a detailed protocol for generating 2D intestinal monolayers using Invasin, starting from either fresh human intestinal tissue or from pre-established 3D organoids. These 2D Invasin-cultures recapitulate key aspects of intestinal epithelial biology and are amenable to a broad range of experimental manipulations, including studies on gene function, disease modeling, pathogen interaction, co-cultures, and cell fate determination. These defined 2D-Invasin "organoid-sheets" cultures support the realization of clinical applications using healthy and patient-derived intestinal epithelial cells.

نتیجه فارسی

این مقاله یک پروتکل برای تولید لایه‌های تک‌لایه‌ای اپیتلیوم روده دو بعدی (2D) بدون استفاده از ماتریس حیوانی (مانند ماتریژل) ارائه می‌دهد. این سیستم از پروتئین باکتریایی اینوازین به عنوان جایگزین ماتریس خارج سلولی استفاده می‌کند. این روش به سلول‌های بنیادی روده اجازه می‌دهد تا لایه‌های اپیتلیال همبند و قطبی را تشکیل دهند. این سیستم 2D نسبت به روش‌های سنتی 3D مزایایی مانند تصویربرداری بهتر و سازگاری با اتوماسیون دارد.

  • استفاده از پروتئین اینوازین به عنوان جایگزین ماتریس خارج سلولی (ECM) برای کشت اپیتلیوم روده.
  • توسعه یک سیستم فرهنگ سلولی دو بعدی (2D) که لایه‌های اپیتلیال همبند و قطبی را ایجاد می‌کند.
  • این سیستم 2D نسبت به روش‌های سنتی 3D مزایایی مانند تصویربرداری بهتر و دسترسی آسان به محفظه‌ها دارد.
  • این روش از بافت روده انسانی تازه یا ارگانوئیدهای 3D موجود قابل استفاده است.

ترجمه فارسی چکیده

اپیتلیوم روده از یک لایه سلول‌های قطبی تشکیل شده است که به عنوان یک مانع حیاتی در برابر عوامل بیماری‌زا عمل می‌کند. سلول‌های تیغه‌ای که برای عملکرد روده حیاتی هستند، از سلول‌های بنیادی Lgr5+ در لایه‌های عمیق روده می‌آیند. این سلول‌های بنیادی می‌توانند در محیط آزمایشگاهی تکثیر شوند و به ساختارهای سه بعدی (3D) به نام «ارگانوئید» تبدیل شوند که شباهت زیادی به اپیتلیوم روده دارند. توسعه و حفظ این ارگانوئیدها به یک ترکیب مشخص از عوامل رشد و پشتیبانی ماتریس خارج سلولی (ECM) بستگی دارد. ماتریژل یا BME به عنوان استاندارد استفاده می‌شوند. اخیراً، پروتئین باکتریایی اینوازین به عنوان جایگزین تعریف شده‌ای شناسایی شد که می‌تواند عملکرد ماتریژل/BME را به طور کامل بازتولید کند. با استفاده از اینوازین بازسازی شده روی ترانزول‌ها، یک سیستم فرهنگ سلولی تک‌لایه‌ای دو بعدی (2D) توسعه یافت. سلول‌های بنیادی روده لایه اپیتلیال همبند و قطبی را تشکیل می‌دهند در حالی که توانایی خود را در حفظ ویژگی‌های بنیادی و تفاوت‌یابی به سلول‌های تخصصی حفظ می‌کنند. این سیستم 2D نسبت به فرهنگ‌های 3D سنتی مزایایی مانند تصویربرداری بهتر، دسترسی آسان به محفظه‌های فوقانی و تحتانی و سازگاری با اتوماسیون برای کاربردهای با ظرفیت بالا دارد. اینجا، یک پروتکل دقیق برای تولید لایه‌های تک‌لایه‌ای روده با استفاده از اینوازین، شروع از بافت روده انسانی تازه یا از ارگانوئیدهای 3D موجود ارائه شده است. این فرهنگ‌های 2D اینوازین جنبه‌های کلیدی زیست‌شناسی اپیتلیوم روده را بازتولید می‌کنند و برای طیف وسیعی از تغییرات آزمایشی، از جمله مطالعات عملکرد ژن، مدل‌سازی بیماری، تعامل باکتری‌ها، هم‌کشت‌ها و تعیین سرنوشت سلولی مناسب هستند.

روش پژوهش

اینوازین بازسازی شده روی ترانزول‌ها برای ایجاد یک ماتریس خارج سلولی تعریف شده استفاده می‌شود. سلول‌های بنیادی روده (Lgr5+) در این محیط رشد کرده و لایه‌های تک‌لایه‌ای اپیتلیال را تشکیل می‌دهند.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های گزارش شده شامل نیاز به استفاده از اینوازین بازسازی شده و مقایسه با روش‌های سنتی 3D است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های بنیادی Lgr5+ روده انسانی (از بافت تازه یا ارگانوئیدهای 3D)
مداخله/مواجهه
استفاده از اینوازین به عنوان جایگزین ماتریس خارج سلولی (ECM) برای کشت اپیتلیوم روده در سیستم 2D
مقایسه
فرهنگ‌های سنتی 3D (مانند ماتریژل)
حجم نمونه
گزارش نشده

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

DifferentiationHuman 2D organoid-sheetIntestinal epithelial stem cellsInvasinOrganoidSmall intestineTranswell
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…