PubMed چکیده/رکورد

Production of Viral Particles from a Chikungunya Virus Infectious Clone.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Chikungunya virus (CHIKV) is a positive-sense single-stranded RNA virus, which poses challenges for its study and genetic manipulation. Because direct mutagenesis of viral RNA genomes is technically impractical, reverse genetics systems are essential tools for investigating viral biology. To enable such approaches, infectious clones containing a full-length cDNA copy of the viral genome are constructed. The cDNA is positioned under the control of a bacteriophage RNA polymerase promoter, allowing commercial RNA polymerases to use the linearized plasmid as a template for the in vitro transcription of full-length viral genomic RNA (gRNA). Importantly, positive-sense viral genomes serve as mRNAs for the translation of viral proteins in a cellular environment, meaning that these transcripts contain all the information required to initiate viral replication. Following transfection into permissive cultured cells, viral proteins are expressed, enabling genome replication and, ultimately, the recovery of infectious particles from the cell supernatant. Here, we describe a detailed procedure for generating CHIKV particles through plasmid linearization, in vitro transcription, and subsequent RNA transfection.

نتیجه فارسی

این مقاله روشی را برای تولید ذرات ویروسی چیکونگونیا از طریق کلون‌سازی ژنوم کامل و ترنسکریپتون در vitro توصیف می‌کند. این روش به محققان اجازه می‌دهد تا ژنوم ویروس را در محیط آزمایشگاهی بازتولید کنند. کلون‌های عفونی تحت کنترل پلیمراز رنای باکتری‌افاژ قرار می‌گیرند تا RNA ژنوم کامل تولید شود. پس از ترنسفکشن در سلول‌ها، ذرات عفونی بازیابی می‌شوند.

  • ویروس چیکونگونیا یک ویروس رنایی مثبت سنس است.
  • سیستم‌های ژنتیک معکوس برای مطالعه ویروس ضروری هستند.
  • کلون‌های عفونی حاوی کپی کامل دی‌ان‌ای جی ژنوم هستند.
  • پلاسمیدها برای ترنسکریپتون در vitro خطی‌سازی می‌شوند.
  • ذرات عفونی پس از ترنسفکشن در سلول‌ها بازیابی می‌شوند.

ترجمه فارسی چکیده

ویروس چیکونگونیا (CHIKV) یک ویروس رنا تک‌رشته‌ای مثبت سنس است که چالش‌هایی برای مطالعه و مهندسی ژنتیک آن ایجاد می‌کند. از آنجا که جهش مستقیم ژنوم‌های رنایی ویروس از نظر فنی غیرممکن است، سیستم‌های ژنتیک معکوس ابزارهای ضروری برای بررسی زیست‌شناسی ویروسی هستند. برای فعال‌سازی این رویکردها، کلون‌های عفونی حاوی یک کپی کامل دی‌ان‌ای جی (cDNA) از ژنوم ویروس ساخته می‌شوند. دی‌ان‌ای جی تحت کنترل یک پراموتور پلیمراز رنای باکتری‌افاژ قرار می‌گیرد که به پلیمرازهای رنایی تجاری اجازه می‌دهد از پلاسمید خطی‌شده به عنوان الگوی ترنسکریپتون کامل ژنوم رنایی ویروس (gRNA) در محیط آزمایشگاهی استفاده کنند. به‌طور مهم، ژنوم‌های رنایی مثبت‌سنس به عنوان پیام‌های رنایی (mRNA) برای ترجمه پروتئین‌های ویروسی در محیط سلولی عمل می‌کنند، به این معنی که این ترنسکریپت‌ها تمام اطلاعات مورد نیاز برای آغاز بازتولید ویروس را در بر دارند. پس از ترنسفکشن در سلول‌های کشت قابل قبول، پروتئین‌های ویروسی بیان می‌شوند که امکان بازتولید ژنوم و در نهایت بازیابی ذرات عفونی از سوپرناتانت سلولی را فراهم می‌کنند. در اینجا، یک روش دقیق برای تولید ذرات CHIKV از طریق خطی‌سازی پلاسمید، ترنسکریپتون در vitro و ترنسفکشن رنایی بعدی توصیف شده است.

روش پژوهش

روش شامل ساخت کلون‌های عفونی حاوی کپی کامل دی‌ان‌ای جی ژنوم است. دی‌ان‌ای جی تحت کنترل پلیمراز رنای باکتری‌افاژ قرار می‌گیرد. پلاسمیدها خطی‌سازی می‌شوند و برای ترنسکریپتون در vitro استفاده می‌شوند. سپس RNA ترنسفکت می‌شود.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های گزارش شده در متن شامل عدم امکان جهش مستقیم ژنوم رنایی و نیاز به سیستم‌های ژنتیک معکوس است. همچنین، روش نیازمند سلول‌های کشت قابل قبول است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های کشت قابل قبول (permissive cultured cells)
مداخله/مواجهه
ترنسفکشن RNA ژنوم کامل (gRNA) تولید شده در vitro
مقایسه
مورد گزارش نشده است
حجم نمونه
مورد گزارش نشده است

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

In-vitro transcriptionInfectious cloneVirus rescue
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Conditional Knockout Mutant Approach to Study Essential Genes in Chlamydia in Cell Culture and In Vivo.

Identification and characterization of essential Chlamydia-specific factors are vital for the generation of effective therapeutics and vaccines. Despite delays in the development of genetic tools for Chlamydia, significant advancements in Chlamydia genetic manipulation have been made over the last decade and a half, now allowing for the targeted interruption or deletion of chromosomal genes. However, because of the obligate intracellul…

PubMed2027

Analysis of Cell Populations from Arbovirus-Infected Tissues by Flow Cytometry.

Arboviruses still represent a major challenge to public health in many parts of the world. Despite shared epidemiological characteristics, each arboviral disorder displays distinct cellular tropism and activation patterns, progressing to immunopathological outcomes that remain not fully elucidated. A deeper understanding of these processes requires methodologies capable of characterizing the often-complex cellular responses. In this co…

PubMed2027

Analysis of Chlamydia trachomatis Gene Function via Controlled Up- or Downregulation.

Due to genome streamlining, many genes in the ~1 Mb genome of Chlamydia trachomatis are essential and cannot be deleted. Ectopic overexpression and CRISPRi-based knockdown are complementary genetic approaches to study the function of genes in C. trachomatis, including essential genes. When used in combination with inducible promoters, these tools allow researchers to determine how precise regulation of gene expression contributes to pr…

PubMed2027

Analysis of Spatial Gene Expression in Chlamydia Using Fluorescent In Situ Hybridization.

The obligate intracellular bacterium Chlamydia employs a unique, asynchronous biphasic developmental cycle characterized by distinct morphological forms: the replicative reticulate body (RB), the infectious elementary body (EB), and an intermediate body (IB). The simultaneous presence of these phenotypically distinct cell types throughout infection complicates the study of gene expression regulation during development. Conventional pop…