PubMed چکیده/رکورد

Enhancing the Functionality of Human Bone Marrow-Derived Mesenchymal Stromal Cells Using Signaling Modulators.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Bone marrow-derived mesenchymal stem/stromal cells (BM-MSCs) possess an inherent capacity to support hematopoiesis in vitro. As a result, they are often used as feeder layers for the ex vivo expansion of hematopoietic stem cells (HSCs) or coinfused with HSCs to improve the success of clinical transplants. However, MSCs isolated from non-hematopoietic tissues such as adipose or dental tissue may not be as effective as BM-MSCs in supporting hematopoiesis. Additionally, BM-MSCs tend to lose their functional ability after extended in vitro culture, which is necessary for producing sufficient cell numbers for clinical use. These limitations underscore the importance of pretreating MSCs with suitable signaling modulators to boost their functionality. Reliable in vitro assays play a crucial role in finding such signaling compounds and evaluating their effects on MSCs. Conventional assays, such as long-term-culture-initiating assay (LTC-IC assay) or colony-forming-unit assay (CFU assay), chemotactic migration assays (e.g., Transwell assay), etc., primarily evaluate the functional competence of HSCs and HSPCs, but provide little insight into the hematopoiesis-supportive capacity of MSCs. This chapter describes two such assays: one is designed to assess the hematopoietic stem/progenitor cell (HSPC)-supporting capacity of primed MSCs, and the other is specifically aimed at their ability to support the growth of primitive HSCs. These assays can serve as initial screens to test the impact, whether positive or negative, synergistic or antagonistic, of known signaling compounds, bioactive peptides, growth factors, and cytokines on MSC function or to discover new entities that could boost the functionality of MSCs.

نتیجه فارسی

این فصل به بررسی آزمایش‌های آزمایشگاهی برای ارزیابی و بهبود توانایی حمایت‌کننده سلول‌های بنیادی و بافت‌پوشان استخوانی (BM-MSCs) در حمایت از رشد سلول‌های بنیادی خونی می‌پردازد. نویسنده توصیفی از دو آزمایش خاص ارائه می‌دهد که می‌توانند برای غربالگری تأثیر مواد شیمیایی و عوامل رشد بر عملکرد MSCها استفاده شوند.

  • BM-MSCs برای گسترش سلول‌های بنیادی خونی در محیط آزمایشگاهی استفاده می‌شوند.
  • BM-MSCs ممکن است پس از کشت طولانی‌مدت در محیط آزمایشگاهی عملکرد خود را از دست بدهند.
  • مولدین سیگنال می‌توانند برای بهبود عملکرد MSCها استفاده شوند.
  • این فصل دو آزمایش را برای ارزیابی ظرفیت حمایت‌کننده MSCها توصیف می‌کند.
  • این آزمایش‌ها می‌توانند برای غربالگری تأثیر مواد شیمیایی بر عملکرد MSCها استفاده شوند.

ترجمه فارسی چکیده

سلول‌های بنیادی و بافت‌پوشان استخوانی (BM-MSCs) ظرفیت طبیعی برای حمایت از هماتوپوئز در محیط آزمایشگاهی دارند. به همین دلیل، اغلب به عنوان لایه‌های تغذیه‌ای برای گسترش سلول‌های بنیادی خونی (HSCs) یا به صورت هم‌تزریق با HSCs استفاده می‌شوند. با این حال، MSCهای جداسازی شده از بافت‌های غیرخونی مانند چربی یا دندان ممکن است در حمایت از هماتوپوئز به اندازه BM-MSCs مؤثر نباشند. علاوه بر این، BM-MSCs تمایل دارند توانایی عملکردی خود را پس از کشت طولانی‌مدت در محیط آزمایشگاهی از دست دهند که برای تولید تعداد کافی سلول برای استفاده بالینی ضروری است. این محدودیت‌ها اهمیت پیش‌درمانی MSCها با مولدین سیگنال مناسب را برجسته می‌کنند. این فصل دو آزمایش را توصیف می‌کند: یکی برای ارزیابی ظرفیت حمایت‌کننده HSPC و دیگری برای ارزیابی توانایی آن‌ها در حمایت از رشد HSCهای اولیه. این آزمایش‌ها می‌توانند به عنوان غربالگری اولیه برای بررسی تأثیر مواد شیمیایی، پپتیدها، عوامل رشد و سیتوکین‌های شناخته‌شده بر عملکرد MSCها استفاده شوند.

روش پژوهش

این فصل توصیفی از دو آزمایش آزمایشگاهی است که برای ارزیابی ظرفیت حمایت‌کننده سلول‌های بنیادی و بافت‌پوشان استخوانی (BM-MSCs) در حمایت از رشد سلول‌های بنیادی خونی طراحی شده‌اند.

محدودیت‌ها

متن ارائه شده توضیحی در مورد محدودیت‌های روش‌شناسی یا نتایج آزمایش‌ها نمی‌دهد.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های بنیادی و بافت‌پوشان استخوانی مشتق از مغز استخوان (BM-MSCs)
مداخله/مواجهه
مولدین سیگنال، پپتیدهای بیولوژیک فعال، عوامل رشد و سیتوکین‌ها
مقایسه
نامشخص (بررسی تأثیر بر عملکرد MSC)
حجم نمونه
نامشخص

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

CD34CFU assayCell–cell interactionsHSCsHSPCsHematopoiesisMSCsSignaling modulators
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…