PubMed چکیده/رکورد

Skeletal Muscle Tissue Engineering: Methods and Analysis for the Bio-Fabrication and Validation of a 3D Scaffold-Free Muscle Construct.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

The development of three-dimensional (3D) tissue constructs that accurately replicate the morphology and function of native tissues is critical for advancing tissue engineering and regenerative medicine. Two primary strategies are currently employed: scaffold-based and scaffold-free approaches. Both aim to reproduce a biomimetic microenvironment that supports cell-cell and cell-matrix interactions, enabling the formation of functional tissues. To circumvent the immunological and toxicological limitations related to the use of exogenous scaffold materials, scaffold-free tissue engineering has emerged as a promising alternative. This method utilizes multicellular aggregates that fuse into cohesive structures while naturally producing extracellular matrix (ECM). Harnessing the intrinsic capacity of cells to self-organize and assemble into sheets enhances cell-cell connectivity and promotes spontaneous ECM remodeling, facilitating the formation of scaffold-free tissues. This study outlines the methodology for generating a 3D skeletal muscle tissue in vitro without the use of scaffolds. Here, we describe key analytical techniques, including flow cytometry, immunofluorescence, and histological staining, used to evaluate tissue functionality in physiological and pathological contexts. The proposed protocols enable the creation of a mouse skeletal muscle model suitable for drug screening and testing, considering its advantages and limitations. Furthermore, the integration of patient-derived biopsies or induced pluripotent stem cells (iPSCs) establishes a basis for personalized therapeutic applications in clinical settings.

نتیجه فارسی

این مقاله روش‌شناسی تولید بافت عضلانی اسکلتی سه‌بعدی در vitro را بدون استفاده از سکولار توصیف می‌کند. تکنیک‌های تحلیلی شامل پلاتومتری جریان، ایمونوفلوئورسانس و رنگ‌آمیزی بافت‌شناسی است. این مدل می‌تواند برای غربالگری دارو و کاربردهای درمانی شخصی‌سازی شده استفاده شود.

  • استراتژی‌های مهندسی بافت شامل مبتنی بر سکولار و بدون سکولار است.
  • مهندسی بافت بدون سکولار از تجمعات چندسلولی برای تولید خودکار ماتریکس خارج سلولی استفاده می‌کند.
  • تکنیک‌های تحلیلی شامل پلاتومتری جریان، ایمونوفلوئورسانس و رنگ‌آمیزی بافت‌شناسی است.
  • این مدل می‌تواند برای غربالگری دارو و کاربردهای درمانی شخصی‌سازی شده استفاده شود.

ترجمه فارسی چکیده

توسعه سازه‌های بافت سه‌بعدی که دقیقاً ریخته‌شناسی و عملکرد بافت‌های بومی را تقلید می‌کنند، برای پیشرفت مهندسی بافت و پزشکی بازسازی‌کننده حیاتی است. دو استراتژی اصلی در حال حاضر استفاده می‌شوند: مبتنی بر سکولار و بدون سکولار. هر دو هدف تولید یک محیط میکروبیومیمتیک هستند که تعاملات سلول-سلول و سلول-ماتریکس را پشتیبانی می‌کند و تشکیل بافت‌های عملکردی را ممکن می‌سازد. برای دور زدن محدودیت‌های ایمنیولوژیک و سم‌شناسی مرتبط با استفاده از مواد سکولار خارجی، مهندسی بافت بدون سکولار به عنوان یک جایگزین امیدوارکننده ظهور کرده است. این روش از تجمعات چندسلولی استفاده می‌کند که در ساختارهای یکپارچه ادغام می‌شوند در حالی که به طور طبیعی ماتریکس خارج سلولی (ECM) تولید می‌کنند. بهره‌گیری از ظرفیت درونی سلول‌ها برای خودسازماندهی و چیدمان در صفحات، اتصال سلول-سلول را افزایش می‌دهد و بازسازی خودبه‌خودی ECM را تشویق می‌کند که تشکیل بافت‌های بدون سکولار را تسهیل می‌کند. این مطالعه روش‌شناسی تولید بافت عضلانی اسکلتی سه‌بعدی در vitro را بدون استفاده از سکولار outlines می‌کند. اینجا، ما تکنیک‌های تحلیلی کلیدی، از جمله پلاتومتری جریان، ایمونوفلوئورسانس و رنگ‌آمیزی بافت‌شناسی را که برای ارزیابی عملکرد بافت در زمینه‌های فیزیولوژیک و بیماری‌زایی استفاده می‌شوند، توصیف می‌کنیم. پروتکل‌های پیشنهاد شده امکان ایجاد یک مدل عضلانی اسکلتی موش را برای غربالگری دارو و تست فراهم می‌کنند. علاوه بر این، ادغام بیوپسی‌های بیمار-منشأ یا سلول‌های بنیادی چندتوانی (iPSCs) یک پایه را برای کاربردهای درمانی شخصی‌سازی شده در محیط‌های بالینی ایجاد می‌کند.

روش پژوهش

این مطالعه روش‌شناسی تولید بافت عضلانی اسکلتی سه‌بعدی در vitro را بدون استفاده از سکولار outlines می‌کند. تکنیک‌های تحلیلی شامل پلاتومتری جریان، ایمونوفلوئورسانس و رنگ‌آمیزی بافت‌شناسی است.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های مربوط به استفاده از مدل موش برای کاربردهای بالینی انسانی ذکر نشده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های عضلانی اسکلتی (در مدل موش) و سلول‌های بنیادی چندتوانی (iPSCs) و بافت‌های بیمار-منشأ.
مداخله/مواجهه
مهندسی بافت بدون سکولار برای تولید بافت عضلانی اسکلتی سه‌بعدی.
مقایسه
استراتژی‌های مبتنی بر سکولار (در متن به عنوان استراتژی جایگزین ذکر شده است).
حجم نمونه
ذکر نشده است.

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Drug screening modelsFlow cytometryHistological stainingImmunofluorescencePersonalized regenerative medicineScaffold-free tissue engineeringThree-dimensional tissue
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…