PubMed دسترسی آزاد

Benchmarking three simple DNA staining-based image metrics for live-cell tracking of chromatin organization.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Quantifying chromatin-state dynamics in living cells remains challenging, in part because most methods require fixation or cell lysis. Here, we introduce two simple DNA image-derived metrics - Diffuse Signal Index (DSI)and 1-Gini - and benchmark them against the coefficient of variation (CV) as fixation-free readouts of chromatin reorganization. Leveraging the pronounced compact-to-decompact chromatin transition of NETosis, we show that all three metrics track progressive chromatin reorganization, with DSI providing the strongest trajectory-level discrimination between NETing and non-NETing cells. All three metrics also correlate with ATAC-see-based chromatin accessibility measurement in fixed cells, supporting their biological interpretability. In dividing cells, the metrics capture mitotic chromatin compaction and post-mitotic decompaction, demonstrating applicability in diverse biological processes. Together, these results provide a practical framework for extracting readouts of chromatin reorganization from routine live-cell DNA staining. We also provide NucMetrics, an open-source ImageJ/Fiji macro toolset for easily computing CV, DSI and 1-Gini.

نتیجه فارسی

این مطالعه دو شاخص ساده مبتنی بر تصویر DNA (DSI و 1-Gini) را در برابر ضریب تغییرات (CV) برای اندازه‌گیری بازآرایی کروماتین در سلول‌های زنده بدون نیاز به ثابت‌سازی مقایسه می‌کند. نتایج نشان می‌دهد که این شاخص‌ها می‌توانند تغییرات کروماتین را در فرآیندهایی مانند نیوتوز و میتوز ردیابی کنند و با اندازه‌گیری‌های بیولوژیکی دیگر همبستگی دارند. نویسندگان ابزاری متن‌باز به نام NucMetrics برای محاسبه این شاخص‌ها ارائه می‌دهند.

  • معرفی دو شاخص تصویری ساده (DSI و 1-Gini) برای ردیابی کروماتین در سلول‌های زنده.
  • مقایسه این شاخص‌ها با ضریب تغییرات (CV) به عنوان خوانش بدون ثابت‌سازی.
  • نشان دادن کارایی شاخص‌ها در ردیابی بازآرایی کروماتین در فرآیند نیوتوز و میتوز.
  • همبستگی شاخص‌ها با اندازه‌گیری دسترسی کروماتین (ATAC-see) در سلول‌های ثابت.
  • ارائه ابزار متن‌باز NucMetrics برای محاسبه آسان این شاخص‌ها.

ترجمه فارسی چکیده

کمیت‌سازی دینامیک‌های حالت کروماتین در سلول‌های زنده همچنان چالش‌برانگیز است، به‌ویژه به این دلیل که اکثر روش‌ها نیاز به ثابت‌سازی یا لیزه کردن سلول دارند. در اینجا، ما دو شاخص ساده مبتنی بر تصویر DNA - شاخص سیگنال پراکنده (DSI) و 1-Gini - را در برابر ضریب تغییرات (CV) به عنوان خوانش‌های بدون ثابت‌سازی برای بازآرایی کروماتین مقایسه می‌کنیم. با بهره‌گیری از انتقال متمایز کروماتین از حالت فشرده به حالت منبسط در نیوتوز، نشان می‌دهیم که همه سه شاخص تغییرات بازآرایی کروماتین را ردیابی می‌کنند، با این تفاوت که DSI بیشترین تمایز را در سطح مسیر بین سلول‌های نیوتوز و غیر-نیوتوز ارائه می‌دهد. همه سه شاخص همچنین با اندازه‌گیری دسترسی کروماتین مبتنی بر ATAC-see در سلول‌های ثابت همبستگی دارند که پشتیبانی از تفسیر زیستی آن‌ها را نشان می‌دهد. در سلول‌های تقسیم‌کننده، این شاخص‌ها فشرده‌سازی کروماتین میتوزی و بازآرایی پس از میتوز را ثبت می‌کنند که کاربرد در فرآیندهای زیستی متنوع را نشان می‌دهد. این نتایج یک چارچوب عملی برای استخراج خوانش‌های بازآرایی کروماتین از رنگ‌آمیزی معمول DNA سلول‌های زنده ارائه می‌دهند. ما همچنین ابزارهای ماکرو NucMetrics، یک مجموعه ابزار متن‌باز برای ImageJ/Fiji، برای محاسبه آسان CV، DSI و 1-Gini ارائه می‌دهیم.

روش پژوهش

شاخص‌های DSI و 1-Gini در برابر ضریب تغییرات (CV) برای اندازه‌گیری بازآرایی کروماتین در سلول‌های زنده بدون ثابت‌سازی مقایسه شدند. داده‌ها با استفاده از فرآیند نیوتوز که شامل انتقال کروماتین از حالت فشرده به حالت منبسط است، جمع‌آوری شدند.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های گزارش شده شامل نیاز به رنگ‌آمیزی DNA در سلول‌های زنده است. تفسیر دقیق نتایج ممکن است به داده‌های تکمیلی بیشتری نیاز داشته باشد.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های زنده (شامل سلول‌های تقسیم‌کننده)
مداخله/مواجهه
استفاده از شاخص‌های تصویری DSI و 1-Gini برای ردیابی کروماتین
مقایسه
ضریب تغییرات (CV) به عنوان خوانش بدون ثابت‌سازی
حجم نمونه
عدد گزارش نشده

متن کامل اصلی

نسخه دارای مجوز در منبع علمی در دسترس است.

لینک مستقیم از metadata منبع گرفته شده و در تب جدید باز می‌شود.

باز کردن متن کامل

کلیدواژه‌ها

ChromatinDNA stainingNETosischromatin reorganizationimage analysismitosisnucleus
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Defined Strategy for Multi-Lineage Differentiation of Gastric Organoids.

In the gastric glands, adult stem cells differentiate into multiple epithelial lineages, including pit mucous cells, acid-secreting parietal cells, and enzyme-producing chief cells. Efficient and controllable lineage specification from adult gastric stem cells is essential for modeling gastric homeostasis and disease in vitro. Organoids are a good model for investigating cell differentiation and organ formation. However, methods to ach…

PubMed2027

A Standardized Protocol for Generating iPSC-Derived Human Microglia for Functional Genomic Assays.

Human induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived microglia (iMG) provide an in vitro experimental system for studying human microglial biology, neuroinflammation, and genetic risk mechanisms associated with neurological disease. This chapter describes a standardized, scalable, and reproducible protocol for the differentiation of human iPSCs into functional microglia-like cells, with particular emphasis on applications in transcriptio…

PubMed2027

Alkaline Phosphatase Staining of Embryonic Stem Cells.

Alkaline phosphatase (AP) is a widely utilized histochemical marker for assessing the pluripotent state of embryonic stem (ES) cells. Mouse ES cells maintained in an undifferentiated state exhibit high levels of tissue-nonspecific alkaline phosphatase (TNAP) activity, which sharply declines upon differentiation. AP staining provides a rapid, cost-effective, and reliable method to evaluate ES cell colony morphology, confirm maintenance …

PubMed2027

An Electroporation-Based Protocol for Ex Vivo Base Editing: From Design to Quantitative Assessment.

Base editing is a CRISPR variant approach that enables single-nucleotide conversions without generating double-strand breaks. Cytosine and adenine base editors mediate C•G to T•A and A•T to G•C transitions, respectively, by coupling a deaminase to a catalytically impaired Cas9, a modified nuclease that lacks DNA cleavage activity but retains DNA binding capability. By avoiding double-strand breaks, base editing limits reliance on unpre…