PubMed چکیده/رکورد

Generation of DFNA5-deficient chickens reveals a species-specific role of pyroptosis in avian antiviral immunity.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

The global burden of viral diseases in both humans and agricultural animals is exacerbated by dysregulated inflammatory cell death and cytokine storms. Pyroptosis, executed by gasdermin family proteins, is a key driver of this pathology, yet its functional conservation and therapeutic targeting in avian species remain critically unexplored. Here, we establish the first germline-edited heterozygous DFNA5-mutant chicken model using primordial germ cell mediated genome editing. We demonstrate that genetic disruption of DFNA5 markedly attenuates Raptinal-induced pyroptosis and reduces IL-1β and IL-18 secretion. Using an optimized adenoviral dual-sgRNA delivery system, we successfully generated chimeric chickens with stable germline transmission of a frameshift deletion in DFNA5. Notably, DFNA5 deficiency is associated with reduced expression of the viral gp85 gene following avian leukosis virus subgroup J (ALV-J) infection. Mechanistically, transcriptome analysis reveals that downregulated genes in ALV-J-infected DFNA5-mutant cells are enriched in apoptosis and NOD-like receptor signaling pathways, while upregulated genes are associated with cell adhesion, extracellular matrix organization, and homeostatic pathways, suggesting a possible shift from pyroptotic inflammation toward cellular integrity and repair. This work provides genetic evidence that a possible association between DFNA5-mediated pyroptotic responses and establishes a genetic strategy for poultry disease resistance research and for understanding host-virus evolution and viral-induced inflammatory pathologies across vertebrates.

نتیجه فارسی

این مطالعه یک مدل مرغ جهش‌یافته در ژن DFNA5 را ایجاد می‌کند تا نقش پیروپتوز در ایمنی آنتی‌ویروسی پرندگان را بررسی کند. نقص DFNA5 با کاهش پیروپتوز و التهاب و همچنین کاهش بیان ژن ویروسی پس از عفونت ALV-J مرتبط است. مکانیسم‌ها شامل تغییر مسیرهای سیگنال‌دهی به سمت ترمیم سلولی است.

  • ایجاد اولین مدل مرغ جهش‌یافته در DFNA5.
  • کاهش پیروپتوز و ترشح IL-1β/IL-18 در مدل جهش‌یافته.
  • کاهش بیان ژن gp85 پس از عفونت ALV-J.
  • تغییر مسیرهای سیگنال‌دهی به سمت ترمیم سلولی و هموستاز.

ترجمه فارسی چکیده

بار جهانی بیماری‌های ویروسی در انسان‌ها و حیوانات کشاورزی با تنظیم نادرست مرگ سلول‌های التهابی و طوفان‌های سیتوکین تشدید می‌شود. پیروپتوز، که توسط پروتئین‌های خانواده گسدرمین اجرا می‌شود، یک موتور کلیدی از این پاتولوژی است، اما نقش حفظ عملکردی و هدف‌گیری درمانی آن در گونه‌های پرنده به طور بحرانی بررسی نشده است. در اینجا، ما اولین مدل مرغ جهش‌یافته نیمه‌شخص (heterozygous) جهش‌یافته در ژن DFNA5 را با استفاده از ویرایش ژنوم mediated توسط سلول‌های جنینی اولیه ایجاد می‌کنیم. ما نشان می‌دهیم که نقص ژنتیکی DFNA5 به طور قابل توجهی پیروپتوز القا شده توسط Raptinal را کاهش می‌دهد و ترشح IL-1β و IL-18 را کاهش می‌دهد. با استفاده از یک سیستم تحویل دو sgRNA آدنوویروس بهینه‌سازی شده، ما موفق به تولید مرغ‌های چیمریک با انتقال ژنتیکی پایدار حذف فریم‌شیفت در DFNA5 شدیم. به طور قابل توجهی، کمبود DFNA5 با کاهش بیان ژن ویروسی gp85 پس از عفونت ویروس لنفوم پرنده زیرگروه J (ALV-J) مرتبط است. مکانیکاً، تحلیل ترنسکریپتوم نشان می‌دهد که ژن‌های کاهش‌یافته در سلول‌های مبتلا به ALV-J در مدل جهش‌یافته DFNA5 در مسیرهای سیگنال‌دهی NOD-like receptor و آپوپتوز غنی هستند، در حالی که ژن‌های افزایش‌یافته با چسبندگی سلولی، سازماندهی ماتریس خارجی و مسیرهای هموستاتیک مرتبط هستند، که نشان‌دهنده یک تغییر احتمالی از التهاب پیروپتوز به یکپارچگی سلولی و ترمیم است. این کار شواهد ژنتیکی ارائه می‌کند که یک ارتباط احتمالی بین پاسخ‌های پیروپتوز mediated توسط DFNA5 و استقرار یک استراتژی ژنتیکی برای تحقیق مقاومت بیماری‌های طیور و درک تکامل میزبان-ویروس و پاتولوژی‌های التهابی ناشی از ویروس در طی vertebrates است.

روش پژوهش

استفاده از ویرایش ژنوم mediated توسط سلول‌های جنینی اولیه برای ایجاد مدل نیمه‌شخص. استفاده از سیستم تحویل دو sgRNA آدنوویروس برای تولید مرغ‌های چیمریک. تحلیل ترنسکریپتوم برای بررسی مسیرهای ژنتیکی.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های مربوط به مدل نیمه‌شخص (heterozygous) ذکر نشده است. اثرات بالینی یا مقاومت بالقوه در شرایط واقعی کشتار بررسی نشده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
مرغ (Gallus gallus domesticus)
مداخله/مواجهه
نقص ژنتیکی در DFNA5 (جهش‌یافته)
مقایسه
مرغ سالم (wild-type)
حجم نمونه
ذکر نشده است

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

ALV-JCRISPR/Cas9DFNA5 geneGene-edited chickensPrimordial germ cellsPyroptosis
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

Clinical Flow Cytometric Testing in Chronic Lymphocytic Leukemia.

Flow cytometry is the cornerstone for establishing the diagnosis of chronic lymphocytic leukemia (CLL), owing to its characteristic and well-defined immunophenotype that enables accurate distinction from other leukemias and lymphomas. Beyond diagnosis, flow cytometry provides essential prognostic information and allows sensitive detection of minimal residual disease (MRD), a strong predictor of clinical outcome. CLL MRD assessment is i…

PubMed2027

Flow Cytometric Immunophenotyping of Acute Lymphoblastic Leukemia.

Immunophenotyping by flow cytometry is an important component in the diagnostic evaluation of patients with acute lymphoblastic leukemia. This technique further permits the detection of minimal residual disease after therapy, a robust prognostic factor that may guide individualized treatment. We describe here laboratory methods for both the initial characterization of lymphoblasts at diagnosis and the detection of rare leukemic lymphob…

PubMed2027

Immunophenotyping of Acute Myeloid Leukemia.

Immunophenotyping by multiparameter flow cytometry is a rapid and efficient technique to simultaneously assess and correlate multiple individual cell properties like size and internal complexity along with antigen expression in a population of cells. This method is utilized for rapid characterization of the blasts and classification of acute myeloid leukemia (AML) in both the peripheral blood (PB) and bone marrow (BM). This technique i…

PubMed2027

Measurable Residual Disease.

Measurable residual disease (MRD) serves as a critical biomarker of prognosis, treatment efficacy, and clinical outcome. It captures the presence of residual tumor cells below the detection threshold of conventional microscopy. Multiparametric flow cytometry (MFC) offers a rapid, cost-efficient, and widely applicable platform for MRD detection through leukemia-associated immunophenotypes (LAIPs) and deviation-from-normal (DfN) antigen …