PubMed چکیده/رکورد

Cellular Rhythm for Label-Free Tracking of Apoptotic Progression in Leukemia Cells.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Leukemia is a hematological malignancy originating from hematopoietic stem cells with diverse clinical subtypes. Accurate assessment of apoptosis is integral to leukemia research and therapeutic evaluation, providing the foundation for precise diagnosis and optimized therapeutic strategies. Conventional techniques, including flow cytometry and immunofluorescence, have played a pivotal role in advancing apoptosis research. However, their dependence on staining and antibody labeling renders them labor-intensive and time-consuming and introduces the risk of cytotoxicity. This study proposes a label-free detection strategy for leukemia cells based on cellular rhythmicity, implemented through a scattering interferometric microscopy system that enables interference between coverslip-reflected and cell membrane-scattered light. Nanometer-scale membrane displacements, driven by cytoskeletal traction, membrane coupling, and transmembrane ion fluxes, modulate scattering intensity, which is reflected in the interference signals as temporal rhythmic patterns indicative of apoptotic states. Rhythmic patterns were extracted using the Farneback dense optical flow algorithm, while spectral features were obtained from snapshot hyperspectral imaging. These two types of features were integrated through a dual-stream neural network to enable label-free identification of apoptosis progression in multiple leukemia cell types. Experimental results demonstrated a classification accuracy of 95.45% across four leukemia cell lines (K562, MEC-1, Jurkat, and THP-1) under three apoptotic states (viable, early apoptosis, and late apoptosis), with a per-cell detection time of 160 ms. This study proposes a label-free approach that leverages cellular rhythmicity for the recognition of apoptosis progression, providing a novel paradigm for leukemia research and clinical evaluation.

نتیجه فارسی

این مطالعه یک روش تشخیص بدون برچسب را برای آپوپتوز در سلول‌های لنفوم بر اساس الگوهای ریتمیک سلولی معرفی می‌کند. این سیستم از میکروسکوپ تداخل‌سنجی پراکنش استفاده می‌کند و با استخراج ویژگی‌های ریتمی و طیفی و ادغام آن‌ها در یک شبکه عصبی، پیشرفت آپوپتوز را شناسایی می‌کند. این روش نیازی به رنگ‌آمیزی یا آنتی‌بادی ندارد و سرعت بالایی دارد.

  • استراتژی تشخیص بدون برچسب بر اساس الگوهای ریتمیک سلولی.
  • استفاده از میکروسکوپ تداخل‌سنجی پراکنش و شبکه عصبی دو جریانی.
  • دقت طبقه‌بندی ۹۵.۴۵٪ در چهار خط سلولی لنفوم.
  • زمان تشخیص تک‌سلولی ۱۶۰ میلی‌ثانیه.
  • شناسایی سه وضعیت آپوپتوز: زنده، اولیه و ثانویه.

ترجمه فارسی چکیده

لنفوم یک سرطان خونی است که از سلول‌های بنیادی خونی منشأ می‌گیرد و زیرگروه‌های بالینی متنوعی دارد. ارزیابی دقیق آپوپتوز در تحقیقات لنفوم و ارزیابی درمانی نقش کلیدی دارد. تکنیک‌های سنتی مانند سیتومتری جریان و ایمونوفلوئورسانس وابستگی به رنگ‌آمیزی و برچسب‌گذاری آنتی‌بادی را دارند که پرهزینه و زمان‌بر هستند و خطر سمیت سلولی ایجاد می‌کنند. این مطالعه استراتژی تشخیص بدون برچسبی را بر اساس الگوی ریتمیک سلولی پیشنهاد می‌کند که با استفاده از میکروسکوپ تداخل‌سنجی پراکنش اجرا می‌شود. تغییرات میکرونتی‌متری غشا، تحت تأثیر کشش سیتوسکلتی، جفت‌شدگی غشا و جریان یون‌ها، شدت پراکنش را تنظیم می‌کنند که در سیگنال‌های تداخل به صورت الگوهای زمانی ریتمیک که نشان‌دهنده وضعیت‌های آپوپتوز هستند، منعکس می‌شود. الگوها با الگوریتم جریان نوری متراکم Farneback استخراج شدند و ویژگی‌های طیفی از تصویربرداری فراپهن‌باندی گرفته شدند. این دو نوع ویژگی با استفاده از شبکه عصبی دو جریانی ادغام شدند تا تشخیص بدون برچسب پیشرفت آپوپتوز در چندین نوع سلول لنفوم امکان‌پذیر شود. نتایج آزمایشی نشان داد که دقت طبقه‌بندی ۹۵.۴۵٪ در چهار خط سلولی لنفوم (K562، MEC-1، Jurkat و THP-1) در سه وضعیت آپوپتوز (زنده، آپوپتوز اولیه و آپوپتوز ثانویه) با زمان تشخیص تک‌سلولی ۱۶۰ میلی‌ثانیه به دست آمد.

روش پژوهش

این مطالعه از میکروسکوپ تداخل‌سنجی پراکنش برای ثبت سیگنال‌های تداخل استفاده کرد. الگوهای ریتمیک با الگوریتم Farneback استخراج شدند و ویژگی‌های طیفی از تصویربرداری فراپهن‌باندی گرفته شدند. این دو نوع ویژگی در یک شبکه عصبی دو جریانی ادغام شدند.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های این مطالعه در متن گزارش نشده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های لنفوم (خطوط سلولی K562، MEC-1، Jurkat و THP-1)
مداخله/مواجهه
استراتژی تشخیص بدون برچسب بر اساس الگوهای ریتمیک سلولی
مقایسه
تکنیک‌های سنتی وابسته به رنگ‌آمیزی و آنتی‌بادی (مانند سیتومتری جریان و ایمونوفلوئورسانس)
حجم نمونه
تعداد نمونه در متن گزارش نشده است

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

Clinical Flow Cytometric Testing in Chronic Lymphocytic Leukemia.

Flow cytometry is the cornerstone for establishing the diagnosis of chronic lymphocytic leukemia (CLL), owing to its characteristic and well-defined immunophenotype that enables accurate distinction from other leukemias and lymphomas. Beyond diagnosis, flow cytometry provides essential prognostic information and allows sensitive detection of minimal residual disease (MRD), a strong predictor of clinical outcome. CLL MRD assessment is i…

PubMed2027

Flow Cytometric Immunophenotyping of Acute Lymphoblastic Leukemia.

Immunophenotyping by flow cytometry is an important component in the diagnostic evaluation of patients with acute lymphoblastic leukemia. This technique further permits the detection of minimal residual disease after therapy, a robust prognostic factor that may guide individualized treatment. We describe here laboratory methods for both the initial characterization of lymphoblasts at diagnosis and the detection of rare leukemic lymphob…

PubMed2027

Immunophenotyping of Acute Myeloid Leukemia.

Immunophenotyping by multiparameter flow cytometry is a rapid and efficient technique to simultaneously assess and correlate multiple individual cell properties like size and internal complexity along with antigen expression in a population of cells. This method is utilized for rapid characterization of the blasts and classification of acute myeloid leukemia (AML) in both the peripheral blood (PB) and bone marrow (BM). This technique i…

PubMed2027

Measurable Residual Disease.

Measurable residual disease (MRD) serves as a critical biomarker of prognosis, treatment efficacy, and clinical outcome. It captures the presence of residual tumor cells below the detection threshold of conventional microscopy. Multiparametric flow cytometry (MFC) offers a rapid, cost-efficient, and widely applicable platform for MRD detection through leukemia-associated immunophenotypes (LAIPs) and deviation-from-normal (DfN) antigen …