Cellular Rhythm for Label-Free Tracking of Apoptotic Progression in Leukemia Cells.
پخش حرفهای فارسی و انگلیسی
در حال بررسی نسخههای صوتی ذخیرهشده…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت
صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده میشود معمولاً طبیعیترند. انتخاب صدا به صداهای نصبشده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.
چکیده اصلی
Leukemia is a hematological malignancy originating from hematopoietic stem cells with diverse clinical subtypes. Accurate assessment of apoptosis is integral to leukemia research and therapeutic evaluation, providing the foundation for precise diagnosis and optimized therapeutic strategies. Conventional techniques, including flow cytometry and immunofluorescence, have played a pivotal role in advancing apoptosis research. However, their dependence on staining and antibody labeling renders them labor-intensive and time-consuming and introduces the risk of cytotoxicity. This study proposes a label-free detection strategy for leukemia cells based on cellular rhythmicity, implemented through a scattering interferometric microscopy system that enables interference between coverslip-reflected and cell membrane-scattered light. Nanometer-scale membrane displacements, driven by cytoskeletal traction, membrane coupling, and transmembrane ion fluxes, modulate scattering intensity, which is reflected in the interference signals as temporal rhythmic patterns indicative of apoptotic states. Rhythmic patterns were extracted using the Farneback dense optical flow algorithm, while spectral features were obtained from snapshot hyperspectral imaging. These two types of features were integrated through a dual-stream neural network to enable label-free identification of apoptosis progression in multiple leukemia cell types. Experimental results demonstrated a classification accuracy of 95.45% across four leukemia cell lines (K562, MEC-1, Jurkat, and THP-1) under three apoptotic states (viable, early apoptosis, and late apoptosis), with a per-cell detection time of 160 ms. This study proposes a label-free approach that leverages cellular rhythmicity for the recognition of apoptosis progression, providing a novel paradigm for leukemia research and clinical evaluation.
نتیجه فارسی
این مطالعه یک روش تشخیص بدون برچسب را برای آپوپتوز در سلولهای لنفوم بر اساس الگوهای ریتمیک سلولی معرفی میکند. این سیستم از میکروسکوپ تداخلسنجی پراکنش استفاده میکند و با استخراج ویژگیهای ریتمی و طیفی و ادغام آنها در یک شبکه عصبی، پیشرفت آپوپتوز را شناسایی میکند. این روش نیازی به رنگآمیزی یا آنتیبادی ندارد و سرعت بالایی دارد.
- استراتژی تشخیص بدون برچسب بر اساس الگوهای ریتمیک سلولی.
- استفاده از میکروسکوپ تداخلسنجی پراکنش و شبکه عصبی دو جریانی.
- دقت طبقهبندی ۹۵.۴۵٪ در چهار خط سلولی لنفوم.
- زمان تشخیص تکسلولی ۱۶۰ میلیثانیه.
- شناسایی سه وضعیت آپوپتوز: زنده، اولیه و ثانویه.
ترجمه فارسی چکیده
لنفوم یک سرطان خونی است که از سلولهای بنیادی خونی منشأ میگیرد و زیرگروههای بالینی متنوعی دارد. ارزیابی دقیق آپوپتوز در تحقیقات لنفوم و ارزیابی درمانی نقش کلیدی دارد. تکنیکهای سنتی مانند سیتومتری جریان و ایمونوفلوئورسانس وابستگی به رنگآمیزی و برچسبگذاری آنتیبادی را دارند که پرهزینه و زمانبر هستند و خطر سمیت سلولی ایجاد میکنند. این مطالعه استراتژی تشخیص بدون برچسبی را بر اساس الگوی ریتمیک سلولی پیشنهاد میکند که با استفاده از میکروسکوپ تداخلسنجی پراکنش اجرا میشود. تغییرات میکرونتیمتری غشا، تحت تأثیر کشش سیتوسکلتی، جفتشدگی غشا و جریان یونها، شدت پراکنش را تنظیم میکنند که در سیگنالهای تداخل به صورت الگوهای زمانی ریتمیک که نشاندهنده وضعیتهای آپوپتوز هستند، منعکس میشود. الگوها با الگوریتم جریان نوری متراکم Farneback استخراج شدند و ویژگیهای طیفی از تصویربرداری فراپهنباندی گرفته شدند. این دو نوع ویژگی با استفاده از شبکه عصبی دو جریانی ادغام شدند تا تشخیص بدون برچسب پیشرفت آپوپتوز در چندین نوع سلول لنفوم امکانپذیر شود. نتایج آزمایشی نشان داد که دقت طبقهبندی ۹۵.۴۵٪ در چهار خط سلولی لنفوم (K562، MEC-1، Jurkat و THP-1) در سه وضعیت آپوپتوز (زنده، آپوپتوز اولیه و آپوپتوز ثانویه) با زمان تشخیص تکسلولی ۱۶۰ میلیثانیه به دست آمد.
روش پژوهش
این مطالعه از میکروسکوپ تداخلسنجی پراکنش برای ثبت سیگنالهای تداخل استفاده کرد. الگوهای ریتمیک با الگوریتم Farneback استخراج شدند و ویژگیهای طیفی از تصویربرداری فراپهنباندی گرفته شدند. این دو نوع ویژگی در یک شبکه عصبی دو جریانی ادغام شدند.
محدودیتها
محدودیتهای این مطالعه در متن گزارش نشده است.
نمای PICO و پیامدها
- جمعیت
- سلولهای لنفوم (خطوط سلولی K562، MEC-1، Jurkat و THP-1)
- مداخله/مواجهه
- استراتژی تشخیص بدون برچسب بر اساس الگوهای ریتمیک سلولی
- مقایسه
- تکنیکهای سنتی وابسته به رنگآمیزی و آنتیبادی (مانند سیتومتری جریان و ایمونوفلوئورسانس)
- حجم نمونه
- تعداد نمونه در متن گزارش نشده است
متن کامل اصلی
برای بررسی دسترسی کتابخانهای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.
رفتن به منبع اصلی