PubMed دسترسی آزاد

Biosafety of rabies virus and related lyssaviruses: Risks, precautions, and knowledge gaps in diagnostic and research laboratories.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Lyssaviruses cause rabies in mammals, a viral encephalomyelitis that is almost always fatal once clinical symptoms develop and can be transmitted to humans. Given this high fatality rate, strict biosafety measures are essential during laboratory handling of potentially infectious materials. This review critically assesses current biosafety practices in rabies diagnostic and research laboratories by examining principal risk factors, transmission pathways, and the effectiveness of existing preventive measures. We conducted a comprehensive review of the literature on biosafety risks associated with handling rabies virus and related lyssaviruses, including the use of personal protective equipment, sample handling procedures, and chemical and physical methods for virus inactivation. Particular attention was given to documented cases of laboratory-acquired rabies and their implications for laboratory safety. Although laboratory-acquired infections remain rare, their occurrence highlights important gaps in current biosafety practices. The effectiveness of disinfection and inactivation methods varies widely, especially in resource-limited settings, and key diagnostic procedures, such as the direct fluorescent antibody test, require validation under biosafety constraints. Significant knowledge gaps remain regarding infectious dose, the effectiveness of decontamination methods, and diagnostic standardisation. Strengthening evidence-based biosafety protocols and validating inactivation methods are essential to ensure safer rabies diagnostics and to support effective rabies control, particularly in low-resource settings.

نتیجه فارسی

این مرور به بررسی ریسک‌ها و اقدامات ایمنی زیستی در آزمایشگاه‌های هاری می‌پردازد. عفونت‌های حاصل از آزمایشگاه نادر اما حیاتی هستند. روش‌های ضدعفونی متغیر هستند و استانداردسازی تشخیصی نیاز به تأیید دارد. شکاف‌های دانشی در مورد دوز عفونی و روش‌های ضدعفونی وجود دارد. پروتکل‌های مبتنی بر شواهد برای ایمنی زیستی و کنترل هاری در منابع محدود ضروری هستند.

  • عفونت‌های حاصل از آزمایشگاه هاری نادر اما وجود آن‌ها شکاف‌های ایمنی زیستی را نشان می‌دهد.
  • کارایی روش‌های ضدعفونی و غیرفعال‌سازی در منابع محدود متغیر است.
  • روش‌های تشخیصی مانند تست آنتی‌بادی فلورسنت مستقیم نیاز به تأیید در محدودیت‌های ایمنی زیستی دارند.
  • شکاف‌های دانشی در مورد دوز عفونی و استانداردسازی تشخیصی وجود دارد.

ترجمه فارسی چکیده

لیزاوارها باعث بیماری هاری در پستانداران می‌شوند، یک عفونت عصب‌مغزی ویروسی که تقریباً همیشه کشنده است و می‌تواند به انسان منتقل شود. با توجه به نرخ مرگ‌ومیر بالا، اقدامات ایمنی زیستی سخت‌گیرانه در هنگام کار با مواد بالقوه عفونی در آزمایشگاه ضروری است. این مرور به ارزیابی انتقادی عملیات ایمنی زیستی فعلی در آزمایشگاه‌های تشخیصی و پژوهشی هاری می‌پردازد. تمرکز بر عوامل ریسک اصلی، مسیرهای انتقال و کارایی اقدامات پیشگیرانه موجود بوده است. تلاش‌ها برای شناسایی موارد عفونت‌های حاصل از آزمایشگاه و اهمیت آن‌ها برای ایمنی آزمایشگاه مورد توجه قرار گرفته است. با وجود اینکه عفونت‌های حاصل از آزمایشگاه نادر هستند، وجود آن‌ها شکاف‌های مهمی در عملیات ایمنی زیستی فعلی را نشان می‌دهد. کارایی روش‌های ضدعفونی و غیرفعال‌سازی متغیر است و شکاف‌های دانشی مهمی در مورد دوز عفونی و استانداردسازی تشخیصی وجود دارد. تقویت پروتکل‌های ایمنی زیستی مبتنی بر شواهد و اعتبارسنجی روش‌های غیرفعال‌سازی برای اطمینان از تشخیص‌های ایمن‌تر هاری ضروری است.

روش پژوهش

مرور جامع ادبیات در مورد ریسک‌های ایمنی زیستی هارا انجام شد.

محدودیت‌ها

محدودیت‌های منابع محدود در تأثیر روش‌های ضدعفونی ذکر شده است.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
ماده بالقوه عفونی هاری و لیزاوارها
مداخله/مواجهه
اقدامات ایمنی زیستی، تجهیزات حفاظت فردی، روش‌های ضدعفونی و غیرفعال‌سازی
مقایسه
روش‌های فعلی و استانداردها
حجم نمونه
خیر

متن کامل اصلی

نسخه دارای مجوز در منبع علمی در دسترس است.

لینک مستقیم از metadata منبع گرفته شده و در تب جدید باز می‌شود.

باز کردن متن کامل
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

Assays of Antifungal Activity of an Antimicrobial Peptide Against Botrytis cinerea.

Antimicrobial peptides (AMPs) represent the first line of host immune defense against a broad spectrum of microorganisms. Whether naturally occurring or synthetically designed, these small peptides can potently inhibit microbial growth and remain stable under diverse conditions. Most AMPs act by directly disrupting fungal or bacterial membranes. In this study, we identified a glycine-rich peptide with strong antifungal activity against…

PubMed2027

Assessing Sensitivity to Antifungal Plant Compounds or Agrochemicals.

Botrytis cinerea, a major fungal pathogen of crops, has been extensively studied for its resistance to antifungal plant metabolites and agrochemicals. Evaluating the sensitivity of B. cinerea to these compounds is crucial for understanding its pathogenicity and for developing effective plant protection strategies. This study describes two methods for antifungal sensitivity assessment: the spot assay, which visualizes fungal growth on a…

PubMed2027

Assessing the Vector Competence for Chikungunya Virus in Mosquitoes.

Chikungunya virus (CHIKV) is a human pathogenic, mosquito-borne virus (arbovirus), which is causing epidemic outbreaks among human populations in Africa, Asia, Europe, and South- and Central America including the Caribbean. The development of novel approaches to prevent mosquito transmission of the virus in the field requires a detailed study of CHIKV interactions with its mosquito vectors in the laboratory. In this chapter, we describ…

PubMed2027

Automated Counting of Chikungunya Virus-Formed Plaques.

The cytopathic effect (CPE) is a key to understanding the pathogenicity of the chikungunya virus (CHIKV) and is useful for evaluating viral infectivity in vitro. The plaque assay, based on the CPE induced by viral infection, provides an infectious virus titer for test samples. Additionally, the assay is simple, quantitative, and cost-effective. Thus, the plaque assay remains the gold standard for determining the infectivity of CHIKV. H…