PubMed چکیده/رکورد

Split-GFP Reporter-Based Detection of Chlamydia trachomatis Inclusion Damage.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Chlamydia trachomatis, an obligate intracellular pathogen responsible for trachoma and widespread urogenital infections, replicates exclusively within the confines of a membrane-bound vacuole known as the inclusion. This compartment shields the bacterium from host cellular immune detection; thus, clarifying how inclusion integrity is maintained and protected from vacuole-destabilizing host attacks may identify new therapeutic strategies. To enable such insights, we recently developed split-GFP-based microscopic reporters that can detect early forms of membrane damage and track individual bacteria released from compromised inclusions. These reporters rely on infecting GFP1-10-expressing cells with C. trachomatis strains engineered to express either a GFP11-tagged outer membrane protein, exposing GFP11 on the bacterial surface, or a GFP11-tagged inclusion membrane protein, exposing GFP11 to the inclusion lumen. Damage to the inclusion allows GFP1-10 to access the bacteria and inner surface of the inclusion membrane, leading to GFP reconstitution and fluorescence at either cytosol-exposed bacteria or damaged membrane sites. Here, we provide detailed protocols for applying these reporter systems, including the generation of the required bacterial strains, development of a GFP1-10-expressing cell line, and execution of a representative infection experiment.

نتیجه فارسی

این مقاله روش‌های آزمایشگاهی را برای استفاده از گزارش‌گرهای میکروسکوپی مبتنی بر تقسیم‌شده-GFP برای ردیابی آسیب به درون‌گوشته باکتری چلامیدیا تراکوماتیس ارائه می‌دهد. این سیستم‌ها به شناسایی آسیب‌های اولیه غشا و ردیابی باکتری‌های آزاد شده کمک می‌کنند.

  • توسعه سیستم‌های گزارش‌گر مبتنی بر تقسیم‌شده-GFP برای ردیابی آسیب به درون‌گوشته
  • تولید استراین‌های باکتریایی مهندسی شده برای آشکار کردن GFP11
  • توسعه خط سلولی بیان‌کننده GFP1-10
  • ارائه پروتکل‌های دقیق برای اجرای آزمایش‌های عفونت

ترجمه فارسی چکیده

چلامیدیا تراکوماتیس، یک عامل بیماری‌زا داخلی اجباری که مسئول عینک‌کشی و عفونت‌های گسترده ادراری-تناسلی است، به طور انحصاری در قفسه‌ای حاوی غشا شناخته شده به عنوان درون‌گوشته تکثیر می‌شود. این کانال‌بافه باکتری را از شناسایی ایمنی سلولی میزبان محافظت می‌کند؛ بنابراین، روشن شدن اینکه چگونه یکپارچگی درون‌گوشته حفظ و از حملات مخرب میزبان در برابر ناپایداری واکوول حفاظت می‌شود، می‌تواند استراتژی‌های درمانی جدید را شناسایی کند. برای دستیابی به چنین بینش‌هایی، اخیراً گزارش‌گرهای میکروسکوپی مبتنی بر تقسیم‌شده-GFP را توسعه دادیم که می‌توانند اشکال اولیه آسیب به غشا را تشخیص دهند و باکتری‌های منفرد آزاد شده از درون‌گوشته‌های آسیب‌دیده را ردیابی کنند. این گزارش‌گرها وابسته به آلوده کردن سلول‌های بیان‌کننده GFP1-10 با استراین‌های مهندسی شده C. trachomatis هستند که یا پروتئین غشای بیرونی برچسب‌دار شده با GFP11 را بیان می‌کنند که GFP11 را در سطح باکتری آشکار می‌سازند، یا پروتئین غشای درون‌گوشته برچسب‌دار شده با GFP11 را بیان می‌کنند که GFP11 را به لumen درون‌گوشته آشکار می‌سازند. آسیب به درون‌گوشه باعث دسترسی GFP1-10 به باکتری‌ها و سطح داخلی غشای درون‌گوشته می‌شود که منجر به بازسازی GFP و فلورسانس در باکتری‌های آشکار به سیتوپلاسم یا سایت‌های غشای آسیب‌دیده می‌شود. در اینجا، پروتکل‌های دقیقی برای اعمال این سیستم‌های گزارش‌گر، شامل تولید استراین‌های باکتریایی مورد نیاز، توسعه خط سلولی بیان‌کننده GFP1-10 و اجرای یک آزمایش عفونت نمونه ارائه می‌دهیم.

روش پژوهش

روش‌ها شامل تولید استراین‌های باکتریایی مهندسی شده، توسعه خط سلولی بیان‌کننده GFP1-10 و اجرای آزمایش‌های عفونت با استفاده از این سیستم‌های گزارش‌گر است.

محدودیت‌ها

محدودیت‌ها در متن گزارش نشده‌اند.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های بیان‌کننده GFP1-10 و استراین‌های مهندسی شده C. trachomatis.
مداخله/مواجهه
استفاده از گزارش‌گرهای تقسیم‌شده-GFP برای آلوده کردن سلول‌ها.
مقایسه
مقایسه‌ای در متن گزارش نشده است.
حجم نمونه
تعداد نمونه در متن گزارش نشده است.

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

Chlamydia trachomatisCytosolic bacteriaInclusionMembrane damageMicroscopic reportersPathogen-containing vacuoleSplit-GFPVacuolar pathogens
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Microscopy Toolkit for Root Studies in B. distachyon.

The study of plant organogenesis presents significant challenges due to the small number of cells involved in its initial stages. Observing the initial cell divisions becomes increasingly challenging when transitioning from Arabidopsis thaliana (Arabidopsis) to other species. Lateral root (LR) initiation is an essential process for enhancing a plant's ability to access water and nutrients. In most cases, LR formation starts in the peri…

PubMed2027

Advanced Image Generation for Cancer and Stem Cell Biology Using Diffusion Models.

Deep learning has transformed medical image analysis, but progress in cancer and stem cell applications is often constrained by limited access to large, diverse, well-annotated imaging datasets. This bottleneck is especially acute for studies of tumor heterogeneity and cancer stem cell (CSC) biology, where rare phenotypes and dynamic cell-state transitions-frequently linked to stemness-associated transcriptional programs (e.g., OCT4, S…

PubMed2027

Automated Quantification and Morphometric Analysis of Pluripotent Stem Cell Colonies Using ColonyQuant.

Alkaline phosphatase staining is routinely used to evaluate the undifferentiated state of embryonic stem cells, yet quantitative interpretation of colony assays frequently depends on manual inspection and categorical scoring that introduce subjectivity and limit scalability. ColonyQuant provides a standardized, automated framework for objective analysis of alkaline phosphatase-stained colonies from conventional bright-field images. The…

PubMed2027

Cell Biology of Botrytis: Live-Cell Imaging Techniques and Protein Localization Protocols.

Botrytis cinerea is a widely studied model organism for plant-fungal interactions. This chapter provides simple and easy protocols for live-cell imaging techniques and subcellular protein localization studies in B. cinerea in vitro. Using a simple microscopy setup, we describe methods for imaging spore germlings and hyphae and for studying protein dynamics in response to the antifungal compound α-tomatine. The protocols highlight the a…