PubMed چکیده/رکورد

Live Cell Imaging of Chlamydia Inclusion Membrane Proteins Using Genetically Encoded Antibodies.

استودیوی صوتی مقاله

پخش حرفه‌ای فارسی و انگلیسی

در حال بررسی نسخه‌های صوتی ذخیره‌شده…

صوت تولیدشده با هوش مصنوعی است. برای کاربرد علمی یا درمانی، متن و منبع اصلی را بررسی کنید.
خواندن هوشمند فارسی و انگلیسی در حال آماده‌سازی صداهای مرورگر…
تنظیم صدای طبیعی و سرعت

صداهایی که در نامشان «Natural»، «Neural» یا «Online» دیده می‌شود معمولاً طبیعی‌ترند. انتخاب صدا به صداهای نصب‌شده در ویندوز و مرورگر شما بستگی دارد.

چکیده اصلی

Chlamydia subverts host cell pathways by secreting effector proteins into the membrane of its inclusion. These bacterial membrane proteins, called Incs, mediate interactions between the inclusion and the host cell. To study Inc protein dynamics in live cells, we have developed a methodology that relies on host cell expression of antibodies fused to fluorescent proteins, known as frankenbodies, which detect epitopes exposed to the cytosol. HeLa cells are first stably transfected with a plasmid encoding an mScarlet3-tagged anti-FLAG frankenbody. These cells are then infected with Chlamydia expressing a FLAG-tagged Inc protein, which is secreted into the inclusion membrane with the FLAG tag facing the cytosol. Recruitment of the fluorescent anti-FLAG frankenbody to the inclusion is monitored in real time using time-lapse confocal microscopy. This approach has been successfully employed to elucidate the dynamics of IncA on the inclusion membrane and can be expanded to simultaneously investigate multiple Incs, as well as Inc:Inc interactions, by using different tag-frankenbody combinations.

نتیجه فارسی

این مقاله روشی را برای مشاهده دینامیک پروتئین‌های Incs چلامیدیا در سلول‌های زنده با استفاده از آنتی‌بادی‌های متصل به پروتئین‌های فلورسنت (frankenbodies) گزارش می‌کند. این روش شامل ترنسفکت سلول‌های HeLa با آنتی‌بادی ضد FLAG و آلودگی آن‌ها به چلامیدیا با پروتئین Inc برچسب‌دار است.

  • برای مطالعه دینامیک پروتئین‌های Inc در سلول‌های زنده از آنتی‌بادی‌های متصل به پروتئین‌های فلورسنت استفاده می‌شود.
  • سلول‌های HeLa با پلاسمید کدگذاری شده آنتی‌بادی ضد FLAG برچسب‌دار mScarlet3 ترنسفکت می‌شوند.
  • پروتئین‌های Inc با برچسب FLAG به غشای حاوی ترشح شده و برخورد آن‌ها با آنتی‌بادی فلورسنت پایش می‌شود.
  • این روش می‌تواند برای بررسی تعاملات بین پروتئین‌های Inc و مطالعه همزمان چندین پروتئین استفاده شود.

ترجمه فارسی چکیده

چلامیدیا مسیرهای سلول میزبان را با ترشح پروتئین‌های اثرگذار به غشای حاوی خود تغییر مسیر می‌دهد. این پروتئین‌های غشایی، که Incs نامیده می‌شوند، تعامل بین حاوی و سلول میزبان را تسهیل می‌کنند. برای مطالعه دینامیک پروتئین‌های Inc در سلول‌های زنده، روشی توسعه داده شده است که بر بیان آنتی‌بادی‌های متصل به پروتئین‌های فلورسنت در سلول میزبان، که frankenbodies نامیده می‌شوند، تکیه دارد تا اپیتوپ‌های در معرض سیتوپلاسم را تشخیص دهند. سلول‌های HeLa ابتدا به طور پایدار با پلاسمید کدگذاری شده یک frankenbody آنتی‌بادی ضد FLAG با برچسب mScarlet3 ترنسفکت می‌شوند. این سلول‌ها سپس با چلامیدیا آلوده می‌شوند که یک پروتئین Inc با برچسب FLAG بیان می‌کند، که به غشای حاوی ترشح شده و با برچسب FLAG رو به سیتوپلاسم است. جذب frankenbody فلورسنت ضد FLAG به حاوی به صورت لحظه‌ای با میکروسکوپی کانفوکال زمان‌سری پایش می‌شود. این رویکرد با موفقیت برای elucidate دینامیک IncA بر روی غشای حاوی استفاده شده است و می‌تواند برای بررسی همزمان چندین Inc و تعاملات Inc:Inc با استفاده از ترکیبات مختلف برچسب-frankenbody گسترش یابد.

روش پژوهش

سلول‌های HeLa با پلاسمید کدگذاری شده آنتی‌بادی ضد FLAG برچسب‌دار mScarlet3 ترنسفکت می‌شوند. این سلول‌ها سپس با چلامیدیا آلوده می‌شوند که پروتئین Inc با برچسب FLAG بیان می‌کند. جذب آنتی‌بادی به حاوی با میکروسکوپی کانفوکال زمان‌سری پایش می‌شود.

محدودیت‌ها

محدودیت‌ها در متن گزارش نشده‌اند.

استخراج ساختاریافته از متن منبع

نمای PICO و پیامدها

جمعیت
سلول‌های HeLa
مداخله/مواجهه
ترنسفکت با پلاسمید کدگذاری شده آنتی‌بادی ضد FLAG برچسب‌دار mScarlet3 و آلودگی با چلامیدیا بیان‌کننده پروتئین Inc برچسب‌دار FLAG
مقایسه
مورد استفاده نشده است
حجم نمونه
گزارش نشده است

متن کامل اصلی

متن در JumpToDate ذخیره نشده است.

برای بررسی دسترسی کتابخانه‌ای یا خرید، رکورد اصلی را باز کنید.

رفتن به منبع اصلی

کلیدواژه‌ها

ChlamydiaFLAGFrankenbodyHomotypic fusionIncAInclusion membrane proteinIntracellular antibodyLive cell fluorescence microscopyTransfectionTransformation
در همین زیرشاخه

مقاله‌های مرتبط

PubMed2027

A Microscopy Toolkit for Root Studies in B. distachyon.

The study of plant organogenesis presents significant challenges due to the small number of cells involved in its initial stages. Observing the initial cell divisions becomes increasingly challenging when transitioning from Arabidopsis thaliana (Arabidopsis) to other species. Lateral root (LR) initiation is an essential process for enhancing a plant's ability to access water and nutrients. In most cases, LR formation starts in the peri…

PubMed2027

Advanced Image Generation for Cancer and Stem Cell Biology Using Diffusion Models.

Deep learning has transformed medical image analysis, but progress in cancer and stem cell applications is often constrained by limited access to large, diverse, well-annotated imaging datasets. This bottleneck is especially acute for studies of tumor heterogeneity and cancer stem cell (CSC) biology, where rare phenotypes and dynamic cell-state transitions-frequently linked to stemness-associated transcriptional programs (e.g., OCT4, S…

PubMed2027

Automated Quantification and Morphometric Analysis of Pluripotent Stem Cell Colonies Using ColonyQuant.

Alkaline phosphatase staining is routinely used to evaluate the undifferentiated state of embryonic stem cells, yet quantitative interpretation of colony assays frequently depends on manual inspection and categorical scoring that introduce subjectivity and limit scalability. ColonyQuant provides a standardized, automated framework for objective analysis of alkaline phosphatase-stained colonies from conventional bright-field images. The…

PubMed2027

Cell Biology of Botrytis: Live-Cell Imaging Techniques and Protein Localization Protocols.

Botrytis cinerea is a widely studied model organism for plant-fungal interactions. This chapter provides simple and easy protocols for live-cell imaging techniques and subcellular protein localization studies in B. cinerea in vitro. Using a simple microscopy setup, we describe methods for imaging spore germlings and hyphae and for studying protein dynamics in response to the antifungal compound α-tomatine. The protocols highlight the a…